| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 符号说明 | 第13-14页 |
| 第一章 立题目的与依据 | 第14-24页 |
| 1 眼干燥症简介 | 第14页 |
| 2 海藻糖简介 | 第14-20页 |
| 2.1 海藻糖的制备 | 第15-16页 |
| 2.1.1 微生物提取法 | 第15页 |
| 2.1.2 微生物发酵法 | 第15页 |
| 2.1.3 酶转化法 | 第15-16页 |
| 2.1.4 基因工程法 | 第16页 |
| 2.2 海藻糖的生物学特性 | 第16-17页 |
| 2.2.1 稳定生物膜和蛋白质的结构 | 第16页 |
| 2.2.2 保护生物体免受热和干燥的损伤 | 第16-17页 |
| 2.2.3 保护生物体免受氧化应激的损伤 | 第17页 |
| 2.2.4 保护生物体免受缺氧的损伤 | 第17页 |
| 2.3 海藻糖在医药领域中的研究与应用 | 第17-19页 |
| 2.3.1 治疗眼干燥症 | 第17-18页 |
| 2.3.2 治疗亨廷顿病 | 第18页 |
| 2.3.3 降低黏膜给药刺激 | 第18页 |
| 2.3.4 其他 | 第18-19页 |
| 2.4 海藻糖的安全性研究 | 第19-20页 |
| 2.4.1 海藻糖的急性毒性 | 第19页 |
| 2.4.2 海藻糖的长期毒性 | 第19页 |
| 2.4.3 海藻糖的生殖毒性 | 第19页 |
| 2.4.4 海藻糖的致突变实验研究 | 第19-20页 |
| 2.4.5 其它 | 第20页 |
| 3 SH在眼用制剂中的应用 | 第20-22页 |
| 3.1 SH作为滴眼液的媒介 | 第20-22页 |
| 3.1.1 提高生物利用度 | 第21页 |
| 3.1.2 降低药物的副作用 | 第21-22页 |
| 3.1.3 降低防腐剂的不良反应 | 第22页 |
| 3.2 SH治疗眼干燥症和角膜损伤 | 第22页 |
| 4 本课题的研究目的及内容 | 第22-24页 |
| 4.1 研究目的 | 第22页 |
| 4.2 研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 海藻糖的制备及其性质研究 | 第24-42页 |
| 1 材料与仪器 | 第24页 |
| 1.1 材料 | 第24页 |
| 1.2 仪器 | 第24页 |
| 2 方法与结果 | 第24-39页 |
| 2.1 海藻糖原料的制备 | 第24-29页 |
| 2.1.1 提取工艺流程 | 第24页 |
| 2.1.2 提取条件的优化 | 第24-25页 |
| 2.1.3 活性炭脱色 | 第25-27页 |
| 2.1.4 树脂的选择 | 第27-28页 |
| 2.1.5 浓缩和结晶 | 第28页 |
| 2.1.6 精制及干燥 | 第28页 |
| 2.1.7 工艺条件的验证 | 第28-29页 |
| 2.2 海藻糖质量标准研究 | 第29-37页 |
| 2.2.1 蒽酮-硫酸比色法测定海藻糖的含量 | 第29-31页 |
| 2.2.2 HPLC法测定海藻糖的含量 | 第31-34页 |
| 2.2.3 蒽酮-硫酸比色法和HPLC法含量测定比较 | 第34页 |
| 2.2.4 性状 | 第34-35页 |
| 2.2.5 鉴别 | 第35-36页 |
| 2.2.6 一般项目检查 | 第36-37页 |
| 2.3 海藻糖原料的稳定性研究 | 第37-39页 |
| 2.3.1 影响因素实验 | 第37-38页 |
| 2.3.2 加速实验 | 第38页 |
| 2.3.3 长期实验 | 第38-39页 |
| 3 小结 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-42页 |
| 第三章 含玻璃酸钠海藻糖滴眼液的研制 | 第42-59页 |
| 1 材料与仪器 | 第42页 |
| 1.1 材料 | 第42页 |
| 1.2 仪器 | 第42页 |
| 2 方法与结果 | 第42-56页 |
| 2.1 处方依据与筛选 | 第42-46页 |
| 2.1.1 主药含量的确定 | 第42页 |
| 2.1.2 抑菌剂的选择 | 第42-43页 |
| 2.1.3 黏度的调节 | 第43页 |
| 2.1.4 pH调节剂的选择 | 第43-44页 |
| 2.1.5 pH范围选择 | 第44页 |
| 2.1.6 渗透压的调节 | 第44-46页 |
| 2.2 配制工艺研究 | 第46页 |
| 2.2.1 浓配 | 第46页 |
| 2.2.2 稀配 | 第46页 |
| 2.2.3 混合 | 第46页 |
| 2.3 质量标准研究 | 第46-54页 |
| 2.3.1 SH干扰海藻糖的含量测定 | 第46-47页 |
| 2.3.2 单因素优化含量测定样品预处理条件 | 第47-50页 |
| 2.3.3 蒽酮-硫酸比色法测定滴眼液含量方法学研究 | 第50-52页 |
| 2.3.4 HPLC法测定滴眼液含量方法学研究 | 第52-54页 |
| 2.3.5 蒽酮-硫酸比色法和HPLC法含量测定比较 | 第54页 |
| 2.4 稳定性研究 | 第54-56页 |
| 2.4.1 影响因素实验 | 第54-55页 |
| 2.4.2 加速实验 | 第55-56页 |
| 2.4.3 长期实验 | 第56页 |
| 3 小结 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-59页 |
| 第四章 含玻璃酸钠海藻糖滴眼液局部刺激性实验 | 第59-64页 |
| 1 材料与仪器 | 第59页 |
| 1.1 材料 | 第59页 |
| 1.2 仪器 | 第59页 |
| 1.3 实验动物 | 第59页 |
| 2 方法与结果 | 第59-63页 |
| 2.1 动物入选标准与分组 | 第59页 |
| 2.2 动物眨眼次数测定 | 第59-60页 |
| 2.3 短期多次给药的眼刺激实验 | 第60-62页 |
| 2.4 长期给药眼刺激实验 | 第62-63页 |
| 3 小结 | 第63页 |
| 4 讨论 | 第63-64页 |
| 第五章 含玻璃酸钠海藻糖滴眼液药效学研究 | 第64-70页 |
| 1 材料与仪器 | 第64页 |
| 1.1 材料 | 第64页 |
| 1.2 仪器 | 第64页 |
| 1.3 实验动物 | 第64页 |
| 2 方法与结果 | 第64-69页 |
| 2.1 眼干燥症模型的建立 | 第64页 |
| 2.2 眼干燥症模型评估指标 | 第64-65页 |
| 2.2.1 泪腺分泌功能检查 | 第64-65页 |
| 2.2.2 眼表上皮细胞损害检查 | 第65页 |
| 2.3 眼干燥症模型入选指标与分组 | 第65页 |
| 2.4 统计学方法 | 第65页 |
| 2.5 疗效评估 | 第65-69页 |
| 2.5.1 泪液分泌量检查 | 第65-66页 |
| 2.5.2 FLS评分 | 第66页 |
| 2.5.3 组织学分析 | 第66-68页 |
| 2.5.4 SEM观察 | 第68-69页 |
| 3 小结 | 第69页 |
| 4 讨论 | 第69-70页 |
| 结论 | 第70-71页 |
| 本课题的创新点 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第79页 |
