| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 主要符号与缩写 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-37页 |
| 1. 单细胞内氧化、抗氧化小分子物种同时测定的意义 | 第12-14页 |
| 1.1 细胞内氧化、抗氧化小分子物种的生物学效应 | 第12-13页 |
| 1.2 细胞内氧化、抗氧化小分子物种的常用检测方法 | 第13-14页 |
| 2. 微流控芯片电泳分析单细胞内氧化、抗氧化小分子物种的研究进展 | 第14-28页 |
| 2.1 微流控芯片电泳及其检测技术简介 | 第15-19页 |
| 2.2 微流控芯片电泳-激光诱导荧光检测单细胞内氧化、抗氧化小分子物种的研究进展 | 第19-28页 |
| 3. 本论文的工作意义、目的以及研究内容 | 第28-30页 |
| 参考文献 | 第30-37页 |
| 第二章 微流控多色荧光检测装置的设计与搭建 | 第37-47页 |
| 1.引言 | 第37页 |
| 2.实验部分 | 第37-39页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第37-39页 |
| 2.2 微流控多色荧光检测装置 | 第39页 |
| 3.结果与讨论 | 第39-44页 |
| 3.1 微流控多色荧光检测装置的设计与搭建 | 第39-40页 |
| 3.2 多色荧光检测光学系统的调整与优化 | 第40-41页 |
| 3.3 数据处理与荧光串扰补偿 | 第41-44页 |
| 4.本章小结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 第三章 基于多色荧光检测的微流控装置同时定量测定单个原代小鼠肝细胞内H_2O_2，GSH，Cys | 第47-67页 |
| 1.引言 | 第47-48页 |
| 2.实验部分 | 第48-54页 |
| 2.1 微流控多色荧光检测装置 | 第48-49页 |
| 2.2 试剂与材料 | 第49-50页 |
| 2.3 酒精诱导急性肝损伤动物模型建立 | 第50页 |
| 2.4 原代细胞的获取 | 第50-51页 |
| 2.5 样品制备 | 第51页 |
| 2.6 细胞活性检测 | 第51-52页 |
| 2.7 芯片电泳结合多色荧光检测的单细胞分析 | 第52-53页 |
| 2.8 细胞中MDA的检测 | 第53-54页 |
| 3.结果与讨论 | 第54-62页 |
| 3.1 分析条件优化 | 第54-56页 |
| 3.2 分析方法性能 | 第56-57页 |
| 3.3 单细胞内Cys，GSH和H2O2的同时检测及有效性分析 | 第57-58页 |
| 3.4 急性酒精肝损伤模型中单细胞内Cys，GSH和H2O2的同时检测 | 第58-62页 |
| 4.本章小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 附录 作者攻读硕士学位期间的研究成果及参加的课题 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
