| 摘要 | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-51页 |
| 1 干旱胁迫对大豆的影响 | 第13-16页 |
| 1.1 植株生长受到抑制 | 第13-14页 |
| 1.2 根系中不同类型根分配发生变化 | 第14页 |
| 1.3 光合作用能力受到影响 | 第14-15页 |
| 1.3.1 叶片气孔结构的变化 | 第14-15页 |
| 1.3.2 CO_2利用受阻 | 第15页 |
| 1.4 细胞结构和胞内代谢遭到破坏 | 第15-16页 |
| 1.4.1 质膜结构和透性改变 | 第15页 |
| 1.4.2 活性氧积累 | 第15-16页 |
| 1.4.3 代谢过程被破坏 | 第16页 |
| 2 大豆对干旱胁迫的响应机理 | 第16-23页 |
| 2.1 大豆对干旱胁迫响应的形态表现 | 第17-19页 |
| 2.1.1 植株形态表现 | 第17-18页 |
| 2.1.2 根系形态表现与干旱信号的传导 | 第18-19页 |
| 2.2 大豆对干旱胁迫响应的生理指标表现 | 第19-21页 |
| 2.2.1 相对含水量 | 第19页 |
| 2.2.2 渗透调节物质 | 第19-20页 |
| 2.2.3 叶绿素含量 | 第20页 |
| 2.2.4 保护酶系 | 第20页 |
| 2.2.5 内源激素 | 第20-21页 |
| 2.3 大豆对干旱胁迫响应的光合指标表现 | 第21-22页 |
| 2.3.1 叶片气孔导度和蒸腾速率 | 第21页 |
| 2.3.2 净光合速率与胞间CO_2浓度 | 第21-22页 |
| 2.3.3 光合有效辐射通量和光能利用率 | 第22页 |
| 2.4 大豆对干旱胁迫响应的基因表达及调控表现 | 第22-23页 |
| 3 大豆群体遗传多样性、群体结构及关联分析 | 第23-28页 |
| 3.1 分子标记概念及分类 | 第23-26页 |
| 3.1.1 基于DNA分子杂交的分子标记 | 第24页 |
| 3.1.2 基于PCR的DNA分子标记 | 第24-26页 |
| 3.2 大豆遗传多样性与群体结构分析 | 第26-27页 |
| 3.3 大豆农艺性状与分子标记的关联分析 | 第27-28页 |
| 4 大豆抗旱性鉴定与评价 | 第28-31页 |
| 4.1 大豆抗旱性鉴定 | 第28-30页 |
| 4.1.1 自然干旱条件鉴定 | 第28-29页 |
| 4.1.2 温室人工控制水分条件鉴定 | 第29页 |
| 4.1.3 实验室生理生化鉴定 | 第29-30页 |
| 4.2 大豆抗旱性评价 | 第30-31页 |
| 4.2.1. 直接比较法 | 第30页 |
| 4.2.2. 抗旱性分级评价法 | 第30页 |
| 4.2.3. 综合抗旱系数法 | 第30-31页 |
| 4.2.4 抗旱隶属函数法 | 第31页 |
| 5 大豆产量能力的研究 | 第31-35页 |
| 5.1 大豆产量能力研究的国内外现状 | 第31-33页 |
| 5.2 大豆产量相关性状与产量关系的研究 | 第33-35页 |
| 5.2.1 大豆形态性状、产量性状间的关系 | 第33页 |
| 5.2.2 结荚习性与产量的关系 | 第33-34页 |
| 5.2.3 理想株型与产量的关系 | 第34-35页 |
| 6 大豆对其他环境胁迫的抗性研究 | 第35-38页 |
| 6.1 大豆抗病虫害研究 | 第35-36页 |
| 6.2 大豆抗高温、低温研究 | 第36页 |
| 6.3 大豆耐盐性研究 | 第36-37页 |
| 6.4大互耐淹性研究 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-51页 |
| 第二章 不同生态型大豆抗旱应答机理的研究 | 第51-80页 |
| 摘要 | 第51页 |
| 1 试验材料 | 第51-52页 |
| 2 试验方法 | 第52-56页 |
| 2.1 试验设计 | 第53页 |
| 2.2 指标测定及方法 | 第53-55页 |
| 2.2.1 叶片相对含水量 | 第53页 |
| 2.2.2 脯氨酸含量 | 第53页 |
| 2.2.3 相对电导率(REC) | 第53-54页 |
| 2.2.4 叶绿素含量 | 第54页 |
| 2.2.5 过氧化物酶活性 | 第54页 |
| 2.2.6 超氧化物歧化酶 | 第54页 |
| 2.2.7 过氧化氢酶 | 第54-55页 |
| 2.2.8 光合指标 | 第55页 |
| 2.3 数据分析 | 第55-56页 |
| 3 结果 | 第56-76页 |
| 3.1 不同时期各品种生理指标的变化 | 第56-62页 |
| 3.1.1 相对含水量(RWC)的变化 | 第56-57页 |
| 3.1.2 脯氨酸含量(Pro)的变化 | 第57-58页 |
| 3.1.3 相对电导率(REC)的变化 | 第58-59页 |
| 3.1.4 叶绿素含量(Chlorophyll)的变化 | 第59-60页 |
| 3.1.5 各生理指标的干旱响应效应及指标间相关性 | 第60-62页 |
| 3.2 不同时期各品种保护酶指标的变化 | 第62-66页 |
| 3.2.1 过氧化物酶(POD)的变化 | 第62-63页 |
| 3.2.2 超氧化物歧化酶(SOD)的变化 | 第63-64页 |
| 3.2.3 过氧化氢酶(CAT)的变化 | 第64-65页 |
| 3.2.4 各保护酶指标的干旱响应效应及指标间相关性 | 第65-66页 |
| 3.3 不同时期各品种光合指标的变化 | 第66-72页 |
| 3.3.1 净光合速率(Pn)的变化 | 第66-67页 |
| 3.3.2 气孔导度(Gs)的变化 | 第67-68页 |
| 3.3.3 蒸腾速率(TR)的变化 | 第68-69页 |
| 3.3.4 胞间CO_2(Ci)的变化 | 第69-70页 |
| 3.3.5 各光合指标的干旱响应效应及指标间相关性 | 第70-72页 |
| 3.4 各品种抗旱性综合评价 | 第72-73页 |
| 附表 | 第73-76页 |
| 4 讨论 | 第76-78页 |
| 4.1 不同时期生理指标的干旱响应 | 第76-77页 |
| 4.2 不同时期保护酶指标的干旱响应 | 第77页 |
| 4.3 不同时期光合指标的干旱响应 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-80页 |
| 第三章 山西不同生态型大豆根系抗旱应答和地上部分生长的研究 | 第80-104页 |
| 摘要 | 第80-81页 |
| 1 试验材料 | 第81-82页 |
| 2 试验方法 | 第82-83页 |
| 2.1 试验设计 | 第82页 |
| 2.2 指标测定及方法 | 第82-83页 |
| 2.2.1 叶绿素含量 | 第82页 |
| 2.2.2 叶面积测定 | 第82页 |
| 2.2.3 地上部分光合指标测定 | 第82页 |
| 2.2.4 收获及考种 | 第82-83页 |
| 2.3 数据分析 | 第83页 |
| 2.3.1 收获指数 | 第83页 |
| 2.3.2 根冠比 | 第83页 |
| 2.3.3 数据处理 | 第83页 |
| 3 结果 | 第83-89页 |
| 3.1 干旱胁迫对地上部分的影响 | 第83-87页 |
| 3.1.1 干旱胁迫对叶面积的影响 | 第83-84页 |
| 3.1.2 干旱胁迫对叶绿素含量的影响 | 第84-85页 |
| 3.1.3 干旱胁迫对光合指标的影响 | 第85-87页 |
| 3.1.4 干旱胁迫对产量指标的影响 | 第87页 |
| 3.2 干旱胁迫对根系的影响 | 第87-89页 |
| 4 讨论 | 第89-90页 |
| 4.1 干旱对大豆地上部分及根系的影响 | 第89页 |
| 4.2 大豆根系干旱适应的其他方法 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-92页 |
| 附图 | 第92-104页 |
| 第四章 不同生态型大豆产量能力的研究 | 第104-120页 |
| 摘要 | 第104-105页 |
| 1 试验材料 | 第105-107页 |
| 2 试验方法 | 第107页 |
| 2.1 试验设计 | 第107页 |
| 2.2 性状值测定 | 第107页 |
| 2.3 数据分析 | 第107页 |
| 3 结果 | 第107-115页 |
| 3.1 各性状之间相关性分析 | 第107-111页 |
| 3.1.1 株型性状之间及其与单株产量相关性 | 第107-108页 |
| 3.1.2 产量性状之间及其与单株产量相关性 | 第108-109页 |
| 3.1.3 株型性状与产量性状间的相关性 | 第109-111页 |
| 3.2 各农艺性状的主成分分析 | 第111-112页 |
| 3.2.1 农艺性状的主成分提取 | 第111页 |
| 3.2.2 农芝性状的主成分分析 | 第111-112页 |
| 3.3 各农艺性状的聚类分分析 | 第112-114页 |
| 3.4 各农艺性状的效应分析 | 第114-115页 |
| 3.4.1 各株型性状的效应 | 第114页 |
| 3.4.2 各产量性状的效应 | 第114-115页 |
| 4 讨论 | 第115-118页 |
| 4.1 各性状之间的相关性 | 第115-116页 |
| 4.2 农艺性状的主成分分析 | 第116页 |
| 4.3 不同群体的划分与分析 | 第116-117页 |
| 4.4 环境因子对大豆产量能力的影响 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-120页 |
| 第五章 大豆自然群体遗传多样性及农艺、品质性状与SSR标记的关联分析 | 第120-135页 |
| 摘要 | 第120-121页 |
| 1 试验材料 | 第121页 |
| 1.1 群体来源及组成 | 第121页 |
| 1.2 引物来源 | 第121页 |
| 2 试验方法 | 第121-126页 |
| 2.1 试验方法 | 第121-125页 |
| 2.1.1 DNA提取 | 第121-122页 |
| 2.1.2 DNA浓度测定和质量检测 | 第122页 |
| 2.1.3 PCR扩增体系和扩增程序 | 第122-123页 |
| 2.1.4 聚丙烯酰胺凝胶制备和电泳 | 第123-124页 |
| 2.1.5 凝胶银染 | 第124页 |
| 2.1.6 试剂配制 | 第124-125页 |
| 2.2 统计分析 | 第125-126页 |
| 3 结果 | 第126-132页 |
| 3.1 遗传多样性分析 | 第126-127页 |
| 3.2 遗传距离及聚类分析 | 第127-128页 |
| 3.3 群体遗传结构分析 | 第128-130页 |
| 3.4 SSR标记与大豆性状的关联分析 | 第130-131页 |
| 3.5 关联位点优异等位变异分析 | 第131-132页 |
| 4 讨论 | 第132-134页 |
| 参考文献 | 第134-135页 |
| 第六章 山西不同生态型大豆品种苗期耐低温性综合评价 | 第135-154页 |
| 摘要 | 第135-136页 |
| 1 材料和方法 | 第136-139页 |
| 1.1 试验材料 | 第136-137页 |
| 1.2 试验设计 | 第137页 |
| 1.3 测定项目与方法 | 第137-138页 |
| 1.4 数据处理与统计分析 | 第138-139页 |
| 1.4.1 苗期延长率和性状值下降率的计算 | 第138页 |
| 1.4.2 耐低温隶属函数值 | 第138页 |
| 1.4.3 数据分析 | 第138页 |
| 1.4.4 GGE双标图 | 第138-139页 |
| 2 结果 | 第139-148页 |
| 2.1 低温对各品种苗期长度和生长性状的影响 | 第139-140页 |
| 2.2 低温对各品种苗期光合性状的影响 | 第140-142页 |
| 2.3 苗期低温对各品种产量性状的影响 | 第142-145页 |
| 2.4 性状的效应表现与相关性 | 第145-147页 |
| 2.4.1 苗期低温胁迫时光合性状的效应表现与相关性 | 第145-146页 |
| 2.4.2 苗期低温胁迫后产量性状的效应表现与相关性 | 第146-147页 |
| 2.5 各品种苗期耐低温性综合评价 | 第147-148页 |
| 3 讨论 | 第148-151页 |
| 参考文献 | 第151-154页 |
| Abstract | 第154-157页 |
| 致谢 | 第158页 |
