| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文缩写对照 | 第8-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-28页 |
| 1.1 肝纤维化产生机制 | 第12-16页 |
| 1.1.1 肝内组织细胞的激活 | 第13-15页 |
| 1.1.1.1 枯否细胞 | 第13页 |
| 1.1.1.2 肝星状细胞 | 第13-14页 |
| 1.1.1.3 其他细胞 | 第14页 |
| 1.1.1.4 细胞外基质 | 第14-15页 |
| 1.1.3 细胞因子 | 第15-16页 |
| 1.2 肝纤维化诊断 | 第16-17页 |
| 1.3 肝纤维化治疗 | 第17-18页 |
| 1.3.1 细胞保护与细胞因子类药物 | 第17页 |
| 1.3.2 作用于 ECM 类药物 | 第17页 |
| 1.3.3 中药治疗 | 第17-18页 |
| 1.3.4 基因治疗 | 第18页 |
| 1.4 壳聚糖的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4.1 甲壳质的发现与分布 | 第18页 |
| 1.4.2 壳聚糖的结构与理化性质 | 第18-20页 |
| 1.5 壳聚糖的应用进展 | 第20-28页 |
| 1.5.1 生物技术方面 | 第20-21页 |
| 1.5.2 医药卫生方面 | 第21-24页 |
| 1.5.3 日常用品方面 | 第24-25页 |
| 1.5.4 农业方面 | 第25-26页 |
| 1.5.5 应用于工业与环保方面 | 第26-28页 |
| 第二章 材料与方法 | 第28-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-30页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.3 实验药品 | 第29页 |
| 2.1.4 引物序列 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-33页 |
| 2.2.1 大鼠肝纤维化模型的构建 | 第30页 |
| 2.2.2 给药方法 | 第30页 |
| 2.2.3 标本采集 | 第30页 |
| 2.2.4 血液中 ALT、AST 和 ALP 的水平检测 | 第30-31页 |
| 2.2.5 肝组织纤维化程度检测 | 第31页 |
| 2.2.6 肝组织 α-SMA 的定量表达检测 | 第31页 |
| 2.2.7 肝组织中Ⅲ型胶原酶的表达检测 | 第31-33页 |
| 2.3 统计学处理 | 第33-34页 |
| 第三章 实验结果 | 第34-48页 |
| 3.1 大鼠肝纤维化模型构建 | 第34-35页 |
| 3.1.1 肝组织外观形态 | 第34页 |
| 3.1.2 大鼠血清中 ALT、AST、ALP 的变化 | 第34-35页 |
| 3.1.3 大鼠肝组织中 α-SMA 与 COL3mRNA 的表达 | 第35页 |
| 3.2 静脉注射壳聚糖对大鼠肝纤维化的影响 | 第35-48页 |
| 3.2.1 大鼠的表观形态特征与体重变化 | 第35-37页 |
| 3.2.2 血清中 ALT、 AST 和 ALP 的变化 | 第37-41页 |
| 3.2.3 大鼠肝组织 HE 染色结果 | 第41-42页 |
| 3.2.4 壳聚糖对 CCl4诱导大鼠肝纤维化中 ɑ-SMA 表达影响 | 第42-45页 |
| 3.2.5 壳聚糖对 CCl4诱导大鼠肝纤维化中 COL3 的 mRNA 表达影响 | 第45-48页 |
| 第四章 讨论 | 第48-52页 |
| 第五章 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
