| 前言 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-11页 |
| Abstract | 第11-17页 |
| 中英文对照表 | 第21-23页 |
| 第一章 前言 | 第23-43页 |
| 1.1 喉癌的化疗优势研究 | 第23-26页 |
| 1.2 介孔纳米粒子的肿瘤治疗应用 | 第26-41页 |
| 1.2.1 化疗药物载体的研究背景和特点 | 第26-27页 |
| 1.2.2 介孔纳米生物材料概述 | 第27-30页 |
| 1.2.3 介孔二氧化硅纳米粒的制备及其药物载体的应用 | 第30-34页 |
| 1.2.4 介孔二氧化硅纳米粒子叶酸功能化修饰 | 第34-38页 |
| 1.2.5 介孔纳米粒的响应性智能释放体系 | 第38-41页 |
| 1.3 本课题的研究目的及意义 | 第41-43页 |
| 第二章 介孔二氧化硅纳米粒子的制备方法及功能化修饰的研究 | 第43-61页 |
| 2.1 实验仪器及试剂 | 第43-45页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第43-44页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 2.2 功能化介孔二氧化硅纳米粒子药物载体的制备试验方法 | 第45-48页 |
| 2.2.1 介孔纳米粒子的表征方法和测试手段 | 第45页 |
| 2.2.2 叶酸化 pH 温度双响应智能可控释介孔二氧化硅纳米粒子的制备及载药 | 第45-48页 |
| 2.3 实验结果 | 第48-61页 |
| 2.3.1 介孔二氧化硅纳米粒的表征、修饰及载药研究 | 第48-56页 |
| 2.3.2 药物释放研究 | 第56-61页 |
| 第三章 功能化介孔纳米粒子负载顺铂介导喉癌 Hep-2 细胞凋亡的研究 | 第61-87页 |
| 3.1 实验仪器及试剂 | 第61-65页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第61-63页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第63-64页 |
| 3.1.3 试剂的配制 | 第64-65页 |
| 3.1.4 实验细胞 | 第65页 |
| 3.1.5 实验动物 | 第65页 |
| 3.2 药物载体应用试验方法 | 第65-76页 |
| 3.2.1 细胞培养法 | 第65-66页 |
| 3.2.2 MTT 实验 | 第66-68页 |
| 3.2.3 流式细胞仪检测： | 第68-70页 |
| 3.2.4 共聚焦激光扫描显微镜观察 | 第70-71页 |
| 3.2.5 动物模型建立 | 第71页 |
| 3.2.6 肿瘤的生长测定 | 第71页 |
| 3.2.7 肿瘤终末体积测量 | 第71-72页 |
| 3.2.8 肿瘤组织保存 | 第72页 |
| 3.2.9 TUNEL 检测法--MSN@p(NIPAM-co-MA)–FA 载顺铂对肿瘤细胞凋亡的作用 | 第72-73页 |
| 3.2.10 western blot 法--检测肿瘤凋亡相关蛋白的表达 | 第73-76页 |
| 3.3 统计分析 | 第76页 |
| 3.4 药物传递释放、药物毒性检测及流式细胞仪实验结果 | 第76-82页 |
| 3.4.1 药物传递和药物释放 | 第76-78页 |
| 3.4.2 药物毒性的测定 | 第78-79页 |
| 3.4.3 FCM 检测 MSN@p(NIPAM-co-MA)-FA 对顺铂诱导 Hep-2细胞凋亡的增强作用 | 第79-82页 |
| 3.5 裸鼠肿瘤体积检测 | 第82-84页 |
| 3.6 Tunel 法检测细胞凋亡 | 第84-86页 |
| 3.7 western blot 法检测凋亡基因表达 | 第86-87页 |
| 第四章 讨论 | 第87-91页 |
| 4.1 序言 | 第87页 |
| 4.2 介孔二氧化硅的构建和制备 | 第87-88页 |
| 4.3 叶酸化、pH/温度双响应智能控释介孔二氧化硅载顺铂对喉癌Hep-2 细胞的抑制作用 | 第88-89页 |
| 4.4 存在的问题 | 第89-90页 |
| 4.5 结语 | 第90-91页 |
| 展望 | 第91-93页 |
| 参考文献 | 第93-107页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109-110页 |
