| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 文献综述 | 第13-41页 |
| 一、禾本科植物内生真菌研究概况 | 第13-19页 |
| 1. 禾本科植物内生真菌 | 第13-14页 |
| 2. 禾本科植物内生真菌的研究历史 | 第14-15页 |
| 3. 禾本科植物内生真菌的分类 | 第15-19页 |
| 二、禾本科植物内生真菌的生殖模式 | 第19-22页 |
| 1. Epichloae内生真菌的传播方式 | 第19-20页 |
| 2. 交配型基因(mating-type gene) | 第20-21页 |
| 3. 丝状真菌的有性生殖过程 | 第21-22页 |
| 三、禾本科植物内生真菌的作用 | 第22-29页 |
| 1. 抗虫 | 第23页 |
| 2. 抗脊椎动物采食或刈割 | 第23-24页 |
| 3. 抗病 | 第24-25页 |
| 4. 促进植物生长 | 第25页 |
| 5. 对植物生理学特征的影响 | 第25页 |
| 6. 抗旱 | 第25-26页 |
| 7. 其他抗性 | 第26页 |
| 8. 禾本科植物内生真菌的应用 | 第26-29页 |
| 8.1 禾本科植物内生真菌在畜牧业上的应用 | 第26-28页 |
| 8.2 禾本科植物内生真菌在草坪业上的应用 | 第28-29页 |
| 四、本研究的主要内容和研究意义 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-41页 |
| 第一章 黄山拂子茅属植物内生真菌的分离、培养及鉴定 | 第41-59页 |
| 摘要 | 第41页 |
| 前言 | 第41-42页 |
| 1 材料和方法 | 第42-46页 |
| 1.1 植物样品的采集、保存及鉴定 | 第42-43页 |
| 1.2 植物样品镜检 | 第43页 |
| 1.3 内生真菌分离及保藏 | 第43页 |
| 1.4 内生真菌形态学特征 | 第43-44页 |
| 1.5 内生真菌的系统发育学分析 | 第44-46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-54页 |
| 2.1 宿主植物的采集及鉴定 | 第46-47页 |
| 2.2 内生真菌在宿主体内的分布和形态特征 | 第47页 |
| 2.3 内生真菌分离、培养及其形态学特征 | 第47-49页 |
| 2.4 分离菌株系统发育学分析 | 第49-54页 |
| 3. 讨论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 第二章 内生真菌对拂子茅生长特性的影响 | 第59-69页 |
| 摘要 | 第59页 |
| 前言 | 第59-60页 |
| 1 材料与方法 | 第60-61页 |
| 1.1 实验材料 | 第60-61页 |
| 1.2 拂子茅内生真菌的形态学观察 | 第61页 |
| 1.3 拂子茅植株的形态学指标的测定 | 第61页 |
| 1.4 数据统计分析 | 第61页 |
| 2 结果 | 第61-65页 |
| 2.1 拂子茅生长周期的调查 | 第61页 |
| 2.2 内生真菌在宿主植物体内的菌丝形态特征 | 第61-62页 |
| 2.3 内生真菌对拂子茅叶片宽度的影响 | 第62-63页 |
| 2.4 内生真菌对拂子茅茎杆直径的影响 | 第63页 |
| 2.5 内生真菌对拂子茅叶片长度的影响 | 第63-64页 |
| 2.6 内生真菌对拂子茅株高的影响 | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 第三章 内生真菌对拂子茅光合性能的影响 | 第69-79页 |
| 摘要 | 第69页 |
| 前言 | 第69-70页 |
| 1 材料与方法 | 第70页 |
| 1.1 实验材料 | 第70页 |
| 1.2 试验仪器 | 第70页 |
| 1.3 实验方法 | 第70页 |
| 1.4 数据统计分析 | 第70页 |
| 2 结果 | 第70-74页 |
| 2.1 拂子茅有效光强的确定 | 第70-71页 |
| 2.2 内生真菌对拂子茅气孔导度的影响 | 第71-72页 |
| 2.3 内生真菌对拂子茅胞间CO_2的影响 | 第72-73页 |
| 2.4 内生真菌对拂子茅蒸腾速率的影响 | 第73页 |
| 2.5 内生真菌对拂子茅净光合速率的影响 | 第73-74页 |
| 3. 讨论 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-79页 |
| 第四章 内生真菌对拂子茅体内碳水化合物含量的影响 | 第79-91页 |
| 摘要 | 第79页 |
| 前言 | 第79-80页 |
| 1. 材料和方法 | 第80-85页 |
| 1.1 植物材料和测定时间 | 第80-81页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第80页 |
| 1.1.2 测定时间 | 第80-81页 |
| 1.2 试剂和仪器 | 第81页 |
| 1.2.1 试剂 | 第81页 |
| 1.2.2 仪器 | 第81页 |
| 1.3 测定原理 | 第81页 |
| 1.4 植物体内碳水化合物的提取 | 第81-82页 |
| 1.5 测定方法 | 第82页 |
| 1.6 标准曲线的制作 | 第82-85页 |
| 1.6.1 果糖标准曲线制作 | 第82-83页 |
| 1.6.2 蔗糖标准曲线制作 | 第83-84页 |
| 1.6.3 可溶性总糖标准曲线制作 | 第84-85页 |
| 1.7 统计方法 | 第85页 |
| 2. 结果 | 第85-88页 |
| 2.1 内生真菌对拂子茅植株果糖含量的影响 | 第85-86页 |
| 2.2 内生真菌对拂子茅植株蔗糖含量的影响 | 第86-87页 |
| 2.3 内生真菌对拂子茅植株可溶性总糖含量的影响 | 第87-88页 |
| 3. 讨论 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-91页 |
| 第五章 Epichloae内生真菌的MAT基因的检测及其系统发育学分析 | 第91-105页 |
| 摘要 | 第91页 |
| 前言 | 第91-92页 |
| 1. 材料方法 | 第92-95页 |
| 1.1 实验菌株 | 第92-94页 |
| 1.2 实验菌株总D-NA提取 | 第94页 |
| 1.3 PCR检测 | 第94页 |
| 1.3.1 引物设计 | 第94页 |
| 1.3.2 反应程序和反应体系 | 第94页 |
| 1.4 PCR产物测序及特征分析 | 第94-95页 |
| 2. 结果与分析 | 第95-101页 |
| 2.1 引物设计结果 | 第95-97页 |
| 2.2 MAT基因PCR检测结果 | 第97-99页 |
| 2.3 MAT基因系统发育学分析 | 第99-101页 |
| 3. 讨论 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-105页 |
| 综合讨论 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-111页 |
| 全文结论 | 第111-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
