| 中文摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 荧光成像探针 | 第12-14页 |
| 1.1.1 荧光蛋白 | 第13页 |
| 1.1.2 半导体量子点 | 第13页 |
| 1.1.3 共轭聚合物 | 第13-14页 |
| 1.2 阿霉素 | 第14-15页 |
| 1.2.1 理化性质 | 第14-15页 |
| 1.2.2 作用机制 | 第15页 |
| 1.2.3 抗肿瘤谱 | 第15页 |
| 1.2.4 局限性 | 第15页 |
| 1.3 阿霉素脂质体 | 第15-20页 |
| 1.3.1 脂质体的组成与结构 | 第16页 |
| 1.3.2 脂质体的特点 | 第16-17页 |
| 1.3.3 脂质体研究现状 | 第17-19页 |
| 1.3.4 阿霉素脂质体研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 课题的设计思路及研究意义 | 第20-22页 |
| 第2章 脂质体处方制备及药物包封率的检测 | 第22-34页 |
| 2.0 试剂与仪器 | 第22-23页 |
| 2.0.1 试剂 | 第22-23页 |
| 2.0.2 仪器 | 第23页 |
| 2.1 阿霉素测定方法的建立 | 第23-24页 |
| 2.1.1 储备液的配置 | 第23页 |
| 2.1.2 仪器测定条件 | 第23页 |
| 2.1.3 线性关系试验 | 第23-24页 |
| 2.1.4 方法精密度试验 | 第24页 |
| 2.1.5 加样回收率试验 | 第24页 |
| 2.1.6 洗脱曲线的绘制 | 第24页 |
| 2.2 脂质体的包封率 | 第24页 |
| 2.3 脂质体制备工艺的考察 | 第24-27页 |
| 2.3.1 DPPC与DSPE-PEG2000-FA的比例 | 第25页 |
| 2.3.2 磷脂与胆固醇的比 | 第25页 |
| 2.3.3 共轭聚合物PFBT的浓度 | 第25-26页 |
| 2.3.4 水相(NH_4)_2SO_4的浓度 | 第26页 |
| 2.3.5 磷脂与药物的摩尔比 | 第26页 |
| 2.3.6 水浴温度 | 第26页 |
| 2.3.7 超声时间 | 第26页 |
| 2.3.8 孵育温度 | 第26页 |
| 2.3.9 孵育时间 | 第26-27页 |
| 2.3.10 验证试验 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-34页 |
| 2.4.1 阿霉素线性关系的确定 | 第27-28页 |
| 2.4.2 方法学考察 | 第28-29页 |
| 2.4.3 洗脱曲线的绘制 | 第29页 |
| 2.4.4 DPPC与DSPE-PEG2000-FA的比例 | 第29-30页 |
| 2.4.5 磷脂与胆固醇的比例 | 第30页 |
| 2.4.6 共轭聚合物PFBT的浓度 | 第30-31页 |
| 2.4.7 水相(NH_4)_2SO_4的浓度 | 第31页 |
| 2.4.8 磷脂与药物的摩尔比 | 第31页 |
| 2.4.9 水浴温度 | 第31-32页 |
| 2.4.10 超声时间 | 第32页 |
| 2.4.11 孵育温度 | 第32-33页 |
| 2.4.12 孵育时间 | 第33页 |
| 2.4.13 验证试验 | 第33-34页 |
| 第3章 脂质体的质量控制 | 第34-44页 |
| 3.1 试剂与仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.1 试剂 | 第34页 |
| 3.1.2 仪器 | 第34-35页 |
| 3.2 脂质体质量评价 | 第35-37页 |
| 3.2.1 形态学考察 | 第35页 |
| 3.2.2 粒径的测定 | 第35页 |
| 3.2.3 Zeta电位的测定 | 第35-36页 |
| 3.2.4 PFBT包载的定性考察 | 第36页 |
| 3.2.5 PFBT与Dio的比较 | 第36页 |
| 3.2.6 脂质体稳定性考察 | 第36页 |
| 3.2.7 药物的体外释放 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 3.3.1 形态学考察 | 第37-39页 |
| 3.3.2 粒径及Zeta电势 | 第39-40页 |
| 3.3.3 PFBT包载的定性考察 | 第40-41页 |
| 3.3.4 PFBT与Dio的比较 | 第41-42页 |
| 3.3.5 脂质体稳定性考察 | 第42页 |
| 3.3.6 药物释放实验 | 第42-44页 |
| 第4章 脂质体体外细胞实验研究 | 第44-55页 |
| 4.1 试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.1 试剂 | 第44页 |
| 4.1.2 仪器 | 第44-45页 |
| 4.2 细胞复苏与传代 | 第45-46页 |
| 4.2.1 培养基的配制 | 第45页 |
| 4.2.2 样品溶液的配制 | 第45页 |
| 4.2.3 HepG2细胞复苏 | 第45页 |
| 4.2.4 HepG2细胞的传代 | 第45-46页 |
| 4.2.5 MCF-7 细胞复苏 | 第46页 |
| 4.2.6 MCF-7 细胞的传代 | 第46页 |
| 4.3 PFBT-Lip-FA和Dio-Lip-FA细胞毒性研究 | 第46-48页 |
| 4.3.1 细胞毒性实验 | 第46-47页 |
| 4.3.2 结果与讨论 | 第47-48页 |
| 4.4 PFBT-Dox-Lip-FA和Dox -Lip-FA细胞毒性研究 | 第48-50页 |
| 4.4.1 细胞毒性实验 | 第48-49页 |
| 4.4.2 结果与讨论 | 第49-50页 |
| 4.5 载药脂质体的细胞摄取研究 | 第50-55页 |
| 4.5.1 细胞摄取实验 | 第50-51页 |
| 4.5.2 结果与讨论 | 第51-55页 |
| 第5章 脂质体抗肿瘤效果研究 | 第55-63页 |
| 5.1 试剂与仪器 | 第55-56页 |
| 5.1.1 试剂 | 第55页 |
| 5.1.2 仪器 | 第55-56页 |
| 5.2 实验动物 | 第56页 |
| 5.2.1 动物种类 | 第56页 |
| 5.2.2 动物肿瘤模型的建立 | 第56页 |
| 5.3 活体成像 | 第56-58页 |
| 5.3.1 动物分组和给药方案 | 第56-57页 |
| 5.3.2 活体成像实验 | 第57页 |
| 5.3.3 实验结果与讨论 | 第57-58页 |
| 5.4 抗肿瘤效果 | 第58-63页 |
| 5.4.1 动物分组和给药方案 | 第58-59页 |
| 5.4.2 肿瘤体积的测量 | 第59页 |
| 5.4.3 HE染色观察病理变化 | 第59-60页 |
| 5.4.4 实验结果与讨论 | 第60-63页 |
| 第6章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 6.1 主要结论 | 第63-64页 |
| 6.2 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 发表论文及科研情况 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
