缩略语表 | 第5-6页 |
中文摘要 | 第6-10页 |
英文摘要 | 第10-14页 |
前言 | 第15-17页 |
文献回顾 | 第17-30页 |
实验一 BaTiO_3-HA复合材料对成骨细胞作用机制的研究 | 第30-51页 |
1 材料与设备 | 第30-32页 |
1.1 实验动物 | 第30页 |
1.2 主要试剂 | 第30-31页 |
1.3 实验设备 | 第31-32页 |
2 方法 | 第32-39页 |
2.1 BaTiO_3/HA(9:1)复合材料的制备 | 第32-33页 |
2.2 BaTiO_3/ HA复合材料的极化 | 第33-34页 |
2.3 原代成骨细胞培养和传代 | 第34-35页 |
2.4 成骨细胞增殖、粘附、分化检测 | 第35-36页 |
2.5 流式细胞仪及Tunel染色 | 第36-37页 |
2.6 实时定量荧光PCR(Real Time-PCR)检测 | 第37-38页 |
2.7 Western-Blot检测 | 第38-39页 |
2.8 统计学分析 | 第39页 |
3 结果 | 第39-48页 |
3.1 原代大鼠成骨细胞的培养 | 第39-40页 |
3.2 极化作用对于成骨细胞粘附的影响 | 第40-42页 |
3.3 MTT检测结果 | 第42-43页 |
3.4 碱性磷酸酶检测结果 | 第43-44页 |
3.5 细胞凋亡检测结果 | 第44-46页 |
3.6 极化作用对于成骨细胞相关基因表达的影响 | 第46-47页 |
3.7 Western-Blot检测极化作用对于成骨细胞蛋白表达的影响 | 第47-48页 |
4 讨论 | 第48-50页 |
4.1 骨的压电特性的研究进展 | 第48页 |
4.2 BaTiO_3在骨修复材料中的应用 | 第48-49页 |
4.3 极化后复合材料对成骨细胞作用的机制 | 第49-50页 |
4.4 本实验的不足之处 | 第50页 |
5 结论 | 第50-51页 |
实验二 BaTiO_3-HA复合材料的最佳带电量的体外筛选研究 | 第51-66页 |
1 材料与设备 | 第51-52页 |
1.1 实验动物 | 第51页 |
1.2 主要试剂 | 第51-52页 |
1.3 实验设备 | 第52页 |
2 方法 | 第52-56页 |
2.1 不同压电系数BaTiO_3-HA复合材料的制备 | 第52-53页 |
2.2 原代成骨细胞培养和传代 | 第53-54页 |
2.3 成骨细胞增殖、粘附、分化检测 | 第54-55页 |
2.4 流式细胞仪细胞凋亡的检测 | 第55-56页 |
2.5 统计学分析 | 第56页 |
3 结果 | 第56-62页 |
3.1 极化作用对于成骨细胞粘附的影响 | 第56-59页 |
3.2 MTT检测结果 | 第59-60页 |
3.3 碱性磷酸酶检测结果 | 第60-62页 |
3.4 细胞凋亡检测结果 | 第62页 |
4 讨论 | 第62-65页 |
4.1 材料压电系数和表面带电量的关系 | 第62-63页 |
4.2 电荷及电刺激对骨折影响的研究 | 第63-64页 |
4.3 临床中对于不同带电量对比的研究 | 第64-65页 |
4.4 本实验的不足之处 | 第65页 |
5 结论 | 第65-66页 |
实验三 BaTiO_3-HA复合材料及运动刺激对兔桡骨缺损修复效果的实验研究 | 第66-77页 |
1 材料 | 第66-67页 |
1.1 BaTiO_3/HA(9:1)动物实验材料的制备 | 第66页 |
1.2 实验动物 | 第66-67页 |
1.3 实验材料 | 第67页 |
1.4 实验主要仪器和器械 | 第67页 |
2 方法 | 第67-70页 |
2.1 实验设计及分组 | 第67-68页 |
2.2 手术步骤 | 第68-69页 |
2.3 术后X线拍摄 | 第69页 |
2.4 术后2周进行运动刺激实验 | 第69-70页 |
2.5 组织形态学观察及取材的处理 | 第70页 |
2.6 统计学分析 | 第70页 |
3 结果 | 第70-74页 |
3.1 兔双侧桡骨骨缺损模型的建立 | 第70-71页 |
3.2 对实验组采用运动刺激并计步 | 第71页 |
3.3 组织形态学观察结果 | 第71-74页 |
4 讨论 | 第74-76页 |
4.1 动物实验模型的选择 | 第74-75页 |
4.2 骨缺损长度选择 | 第75页 |
4.3 运动刺激对骨缺损的修复作用及其可能机制 | 第75页 |
4.4 本实验的不足之处 | 第75-76页 |
5 结论 | 第76-77页 |
小结 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-90页 |
个人简历和研究成果 | 第90-91页 |
致谢 | 第91页 |