摘要 | 第8-9页 |
英文摘要 | 第9页 |
1 前言 | 第10-16页 |
1.1 MX基因和蛋白概述 | 第10-13页 |
1.1.1 Mx基因 | 第10-11页 |
1.1.2 Mx蛋白 | 第11-13页 |
1.1.3 Mx蛋白的应用 | 第13页 |
1.2 DHAV-1 与DHAV-3 概述 | 第13-15页 |
1.2.1 DHAV概述 | 第13-14页 |
1.2.2 DHAV的流行病学 | 第14页 |
1.2.3 DHAV-1 病原学概述 | 第14-15页 |
1.2.4 DHAV-3 病原学概述 | 第15页 |
1.3 研究的目的与意义 | 第15-16页 |
2 材料与方法 | 第16-25页 |
2.1 试验材料 | 第16-17页 |
2.1.1 毒株及菌株 | 第16页 |
2.1.2 试验动物 | 第16页 |
2.1.3 酶、抗体、主要试剂等 | 第16页 |
2.1.4 主要仪器 | 第16-17页 |
2.2 试验方法 | 第17-25页 |
2.2.1 绍鸭Mx基因CDs的克隆 | 第17-19页 |
2.2.2 绍鸭Mx基因片段的原核表达及抗原性鉴定 | 第19-21页 |
2.2.3 兔抗绍鸭Mx蛋白的多克隆抗体的制备与鉴定 | 第21-22页 |
2.2.4 DHAV-1/-3 诱导SPF鸭胚Mx、IFN-α表达量及病毒载量的变化研究 | 第22-25页 |
3 结果 | 第25-44页 |
3.1 绍鸭MX基因CDS的克隆及鉴定 | 第25-29页 |
3.1.1 绍鸭Mx基因CDs的克隆 | 第25页 |
3.1.2 绍鸭Mx基因CDs的鉴定 | 第25页 |
3.1.3 绍鸭Mx基因CDs的序列测定及进化树分析 | 第25-29页 |
3.2 绍鸭MX基因片段的克隆、原核表达及抗原性鉴定 | 第29-31页 |
3.2.1 绍鸭Mx基因片段的克隆 | 第29页 |
3.2.2 原核表达载体p ET-30a-Mx的构建 | 第29-30页 |
3.2.3 绍鸭Mx基因片段在大肠杆菌中的诱导表达及蛋白纯化 | 第30-31页 |
3.3 兔抗绍鸭MX蛋白多克隆抗体的制备与鉴定 | 第31-33页 |
3.3.1 兔抗绍鸭Mx蛋白多克隆抗体效价的检测 | 第31页 |
3.3.2 兔抗绍鸭Mx蛋白多克隆抗体的Western blot鉴定 | 第31-32页 |
3.3.3 检测成年鸭组织中Mx蛋白的Western blot方法的建立 | 第32-33页 |
3.4 DHAV剂量的确定 | 第33页 |
3.5 DHAV-1 诱导SPF鸭胚MX、IFN-Α表达量及病毒载量的变化研究 | 第33-38页 |
3.5.1 DHAV-1 诱导鸭胚心中的Mx、IFN-α、DHAV-1 变化情况 | 第33页 |
3.5.2 DHAV-1 诱导鸭胚肝中的Mx、IFN-α、DHAV-1 变化情况 | 第33页 |
3.5.3 DHAV-1 诱导鸭胚胃中的Mx、IFN-α、DHAV-1 变化情况 | 第33-34页 |
3.5.4 DHAV-1 诱导鸭胚肠中的Mx、IFN-α、DHAV-1 变化情况 | 第34-35页 |
3.5.5 DHAV-1 诱导鸭胚肌肉中的Mx、IFN-α、DHAV-1 变化情况 | 第35-38页 |
3.6 DHAV-3 诱导SPF鸭胚MX及IFN-Α、DHAV-3 的变化研究 | 第38-44页 |
3.6.1 DHAV-3 诱导鸭胚心中的Mx、IFN-α、DHAV-3 变化情况 | 第38页 |
3.6.2 DHAV-3 诱导鸭胚肝中的Mx、IFN-α、DHAV-3 变化情况 | 第38-39页 |
3.6.3 DHAV-3 诱导鸭胚胃中的Mx、IFN-α、DHAV-3 变化情况 | 第39页 |
3.6.4 DHAV-3 诱导鸭胚肠中的Mx、IFN-α、DHAV-3 变化情况 | 第39-40页 |
3.6.5 DHAV-3 诱导鸭胚肌肉中的Mx、IFN-α、DHAV-1 变化情况 | 第40-44页 |
4 讨论 | 第44-47页 |
4.1 研究背景 | 第44页 |
4.2 鸭MX基因的克隆 | 第44-45页 |
4.2.1 鸭Mx基因两个可变剪接转录本的克隆 | 第44页 |
4.2.2 鸭Mx基因CDs的克隆 | 第44-45页 |
4.3 兔抗绍鸭MX蛋白的多克隆抗体的制备与鉴定 | 第45页 |
4.4 选择SPF鸭胚作为试验对象的依据 | 第45页 |
4.5 DHAV-1/-3 诱导SPF鸭胚MX、IFN-Α表达量及病毒载量的变化 | 第45-47页 |
5 结论 | 第47-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第54页 |