| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第13-28页 |
| 1.1 研究背景 | 第13-14页 |
| 1.2 本研究的目的与意义 | 第14页 |
| 1.3 剑麻成分及其用途 | 第14-19页 |
| 1.3.1 硬质纤维 | 第14页 |
| 1.3.2 甾体皂苷 | 第14-18页 |
| 1.3.3 果胶 | 第18页 |
| 1.3.4 其它 | 第18-19页 |
| 1.4 皂苷类物质的分类及甾体皂苷的理化性质 | 第19-20页 |
| 1.4.1 皂苷类物质的分类 | 第19页 |
| 1.4.2 甾体皂苷的理化性质 | 第19-20页 |
| 1.5 剑麻皂苷元的提取 | 第20-24页 |
| 1.5.1 酸水解法 | 第20-22页 |
| 1.5.2 微生物转化法 | 第22-24页 |
| 1.6 甾体皂苷类物质的检测 | 第24-28页 |
| 1.6.1 紫外-可见分光光度法(UV-VIS法) | 第24页 |
| 1.6.2 流动注射化学发光法(FI-CL法) | 第24-26页 |
| 1.6.3 高效液相色谱法(HPLC法) | 第26-27页 |
| 1.6.4 目前使用的国家检测标准 | 第27-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.2 主要仪器与试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.1 仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.2 试剂 | 第29页 |
| 2.3 剑麻皂苷的生产 | 第29-33页 |
| 2.3.1 剑麻皂苷的分离提取 | 第29-31页 |
| 2.3.2 紫外-可见分光光度法检测剑麻皂苷 | 第31页 |
| 2.3.3 流动注射化学发光法检测剑麻皂苷及其检测条件的优化 | 第31-32页 |
| 2.3.4 大孔树脂法分离纯化剑麻皂苷 | 第32-33页 |
| 2.4 剑麻皂苷元的生产 | 第33-45页 |
| 2.4.1 剑麻皂苷元的分离提取 | 第33-34页 |
| 2.4.2 反向高效液相/蒸发光散射检测器色谱法检测剑麻皂苷元 | 第34页 |
| 2.4.3 流动注射化学发光法检测剑麻皂苷元及其检测条件的优化 | 第34-35页 |
| 2.4.4 硅胶柱层析法分离纯化剑麻皂苷元 | 第35页 |
| 2.4.5 产剑麻皂苷元菌株的筛选及鉴定 | 第35-40页 |
| 2.4.6 菌株ZG-21发酵产剑麻皂苷元条件的优化 | 第40-41页 |
| 2.4.7 菌株ZG-21产皂苷元降解酶的提取及酶促反应条件的优化 | 第41-45页 |
| 3 结果与分析 | 第45-82页 |
| 3.1 剑麻皂苷的生产 | 第45-52页 |
| 3.1.1 比色法检测剑麻皂苷 | 第45页 |
| 3.1.2 流动注射化学发光法检测剑麻皂苷及其检测条件的优化 | 第45-49页 |
| 3.1.3 大孔树脂法提取剑麻皂苷的优化 | 第49-52页 |
| 3.2 剑麻皂苷元的生产 | 第52-82页 |
| 3.2.1 剑麻皂苷元的溶解度 | 第52-53页 |
| 3.2.2 比色法检测剑麻皂苷元 | 第53页 |
| 3.2.3 反向高效液相/蒸发光散射检测器色谱法检测剑麻皂苷元 | 第53-54页 |
| 3.2.4 流动注射化学发光检测剑麻皂苷元及其检测条件的优化 | 第54-57页 |
| 3.2.5 硅胶柱层析分离纯化剑麻皂苷元 | 第57-60页 |
| 3.2.6 产剑麻皂苷元菌株的筛选及鉴定 | 第60-65页 |
| 3.2.7 菌株ZG-21的分子生物学鉴定 | 第65-67页 |
| 3.2.8 菌株ZG-21的生理生化特性鉴定 | 第67-68页 |
| 3.2.9 菌株ZG-21产剑麻皂苷元发酵条件的优化 | 第68-75页 |
| 3.2.10 菌株ZG-21产皂苷元降解酶的提取及酶促反应条件的优化 | 第75-81页 |
| 3.2.11 菌株ZG-21皂苷降解酶的纯化 | 第81-82页 |
| 4 讨论 | 第82-85页 |
| 4.1 在线检测技术与末端检测技术的比较 | 第82页 |
| 4.2 皂苷及皂苷元的清洁生产 | 第82-83页 |
| 4.3 降解剑麻皂苷糖基菌株生物转化机理的探究 | 第83页 |
| 4.4 生物转化产剑麻皂苷元的影响因素 | 第83-84页 |
| 4.5 下一步工作展望 | 第84-85页 |
| 5 结论 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-96页 |
| 附录 | 第96-97页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第97-98页 |
| 发明专利 | 第98页 |
