| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 缩略词表（Abbreviations） | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1 脂类代谢 | 第11-12页 |
| 1.1 脂肪的分解代谢 | 第11页 |
| 1.2 脂肪的合成代谢 | 第11-12页 |
| 2 脂滴 | 第12-15页 |
| 2.1 脂滴的结构和功能 | 第12-13页 |
| 2.2 脂滴表面蛋白 | 第13-14页 |
| 2.2.1 Perilipin | 第13-14页 |
| 2.2.2 ADRP | 第14页 |
| 2.2.3 TIP47 | 第14页 |
| 2.3 脂滴的动态调节 | 第14-15页 |
| 3 CIDEs家族及其生物学功能 | 第15-19页 |
| 3.1 CIDEs家族的基因结构 | 第15-16页 |
| 3.2 CIDEs家族的亚细胞定位 | 第16页 |
| 3.3 CIDEs家族的组织表达分布 | 第16-17页 |
| 3.4 CIDEs家族与脂类代谢 | 第17-19页 |
| 3.4.1 CIDEa与脂类代谢的关系 | 第17-18页 |
| 3.4.2 CIDEb与脂类代谢的关系 | 第18页 |
| 3.4.3 CIDEc/Fsp27与脂类代谢的关系 | 第18-19页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第19-21页 |
| 第二章 肉鸡CIDEa和CIDEc基因的表达谱分析 | 第21-29页 |
| 1 引言 | 第21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-26页 |
| 2.1 材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 试验耗材 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第22页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制及保存 | 第22页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 样品采集及保存 | 第23页 |
| 2.2.2 引物设计与合成 | 第23页 |
| 2.2.3 Total RNA的提取及质量测定 | 第23-24页 |
| 2.2.4 cDNA的合成 | 第24-25页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR测定 | 第25-26页 |
| 2.2.6 数据统计 | 第26页 |
| 3 结果 | 第26-27页 |
| 3.1 CIDEa基因在AA肉鸡中的组织表达谱 | 第26页 |
| 3.2 CIDEc基因在AA肉鸡中的组织表达谱 | 第26-27页 |
| 4 讨论 | 第27-28页 |
| 4.1 CIDEa和CIDEc基因在AA肉鸡中的表达谱相似 | 第27页 |
| 4.2 肉鸡CIDEa和CIDEc基因的表达谱与其他物种相似 | 第27-28页 |
| 5 小结 | 第28-29页 |
| 第三章 CIDEa和CIDEc基因在肉鸡中的发育性表达分析 | 第29-38页 |
| 1 引言 | 第29页 |
| 2 材料与方法 | 第29-34页 |
| 2.1 材料 | 第29-30页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第29页 |
| 2.1.2 试验耗材 | 第29页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第29页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制及保存 | 第29-30页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2.2 方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 样品采集及保存 | 第30页 |
| 2.2.2 血脂指标测定 | 第30-32页 |
| 2.2.3 石蜡组织切片制作 | 第32-33页 |
| 2.2.4 引物设计与合成 | 第33页 |
| 2.2.5 Total RNA的提取及质量测定 | 第33页 |
| 2.2.6 cDNA的合成 | 第33页 |
| 2.2.7 实时荧光定量PCR测定 | 第33页 |
| 2.2.8 数据统计 | 第33-34页 |
| 3 结果 | 第34-37页 |
| 3.1 血脂指标比较结果 | 第34页 |
| 3.2 脂肪组织石蜡切片比较结果 | 第34-35页 |
| 3.3 CIDEa基因在AA肉鸡中的发育性表达 | 第35-36页 |
| 3.4 CIDEc基因在AA肉鸡中的发育性表达 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37页 |
| 5 小结 | 第37-38页 |
| 第四章 CIDEa和CIDEc基因在高、低脂系肉鸡中的表达差异分析 | 第38-44页 |
| 1 引言 | 第38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-40页 |
| 2.1 材料 | 第38-39页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第38页 |
| 2.1.2 试验耗材 | 第38页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第38页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制及保存 | 第38页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第38-39页 |
| 2.2 方法 | 第39-40页 |
| 2.2.1 样品采集及保存 | 第39页 |
| 2.2.2 血脂指标测定 | 第39页 |
| 2.2.3 石蜡组织切片制作 | 第39页 |
| 2.2.4 引物设计与合成 | 第39页 |
| 2.2.5 Total RNA的提取及质量测定 | 第39页 |
| 2.2.6 cDNA的合成 | 第39页 |
| 2.2.7 实时荧光定量PCR测定 | 第39页 |
| 2.2.8 数据统计 | 第39-40页 |
| 3 结果 | 第40-42页 |
| 3.1 血脂指标比较结果 | 第40页 |
| 3.2 脂肪组织石蜡切片比较结果 | 第40-41页 |
| 3.3 CIDEa基因在两个品种肉鸡不同组织中的表达差异 | 第41-42页 |
| 3.4 CIDEc基因在两个品种肉鸡不同组织中的表达差异 | 第42页 |
| 4 讨论 | 第42-43页 |
| 5 小结 | 第43-44页 |
| 第五章 短期禁食对肉鸡CIDEa和CIDEc基因的表达影响 | 第44-47页 |
| 1 引言 | 第44页 |
| 2 材料与方法 | 第44-45页 |
| 2.1 材料 | 第44页 |
| 2.2 方法 | 第44-45页 |
| 2.2.1 样品采集及保存 | 第44页 |
| 2.2.2 引物设计与合成 | 第44页 |
| 2.2.3 Total RNA的提取及质量测定 | 第44页 |
| 2.2.4 cDNA的合成 | 第44-45页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR测定 | 第45页 |
| 2.2.6 数据统计 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-46页 |
| 3.1 短期禁食对肉鸡CIDEa基因的表达影响 | 第45页 |
| 3.2 短期禁食对肉鸡CIDEc基因的表达影响 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46页 |
| 5 小结 | 第46-47页 |
| 全文结论 | 第47-48页 |
| 本研究的创新点 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
