| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 1 引言 | 第9-13页 |
| 1.1 钾素营养 | 第9-10页 |
| 1.1.1 钾素的生理功能 | 第9-10页 |
| 1.1.2 钾素对马铃薯的重要性 | 第10页 |
| 1.2 植物吸收钾素的途径 | 第10-11页 |
| 1.3 钾离子通道蛋白 | 第11-12页 |
| 1.3.1 钾离子通道蛋白简介 | 第11-12页 |
| 1.3.2 钾离子通道蛋白的研究进展 | 第12页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第12-13页 |
| 2 实验材料和方法 | 第13-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-17页 |
| 2.1.1 幼苗 | 第13页 |
| 2.1.2 感受态细胞 | 第13页 |
| 2.1.3 质粒 | 第13-14页 |
| 2.1.4 引物 | 第14-15页 |
| 2.1.5 主要试剂与试剂盒 | 第15页 |
| 2.1.6 主要仪器 | 第15页 |
| 2.1.7 培养基 | 第15页 |
| 2.1.8 主要溶液 | 第15-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-28页 |
| 2.2.1 马铃薯总RNA的提取及浓度和纯度的测定 | 第17-18页 |
| 2.2.2 反转录获得马铃薯的cDNA | 第18-19页 |
| 2.2.3 SKT1基因的克隆 | 第19-20页 |
| 2.2.4 pET30-TEV/LIC重组载体的构建 | 第20-23页 |
| 2.2.5 诱导表达 | 第23-25页 |
| 2.2.6 SKT1重组蛋白包涵体的变性 | 第25页 |
| 2.2.7 SKT1重组蛋白包涵体的纯化 | 第25页 |
| 2.2.8 SKT1重组蛋白包涵体的复性 | 第25-26页 |
| 2.2.9 SKT1蛋白Western blotting鉴定 | 第26-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-34页 |
| 3.1 马铃薯RNA和cDNA的浓度和纯度测定 | 第28页 |
| 3.2 马铃薯SKT1基因的克隆 | 第28-29页 |
| 3.3 SspⅠ酶切pET30载体 | 第29页 |
| 3.4 连接产物转化DH5α | 第29-30页 |
| 3.5 pET30-SKT1重组质粒双酶切鉴定 | 第30-31页 |
| 3.6 重组质粒转化BL21(DE3) | 第31页 |
| 3.7 马铃薯SKT1基因在大肠杆菌中的表达 | 第31-32页 |
| 3.8 SKT1重组蛋白包涵体的纯化与复性 | 第32-33页 |
| 3.9 SKT1蛋白的Western Blotting鉴定 | 第33-34页 |
| 4 结论与讨论 | 第34-35页 |
| 4.1 结论 | 第34页 |
| 4.2 讨论 | 第34-35页 |
| 致谢 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-39页 |
| 作者简介 | 第39页 |
