| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-11页 |
| 英文摘要 | 第11-16页 |
| 缩略词表 | 第17-21页 |
| 引言 | 第21-25页 |
| 第一部分 宫内感染导致未成熟鼠脑白质损伤病理改变 | 第25-45页 |
| 1 前言 | 第25-27页 |
| 2 实验材料和方法 | 第27-33页 |
| 2.1 材料 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.3 统计学方法 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-40页 |
| 3.1 孕鼠及仔鼠情况 | 第33-34页 |
| 3.2 宫内感染对胎鼠、新生鼠体重、脑重影响 | 第34-36页 |
| 3.3 孕鼠子宫及胎盘HE染色病理学检查 | 第36-37页 |
| 3.4 胎鼠和新生鼠脑组织HE染色病理学 | 第37-38页 |
| 3.5 GFAP免疫组化结果 | 第38页 |
| 3.6 宫内感染/炎症后胎鼠和新生大鼠脑组织GFAP、TNF-αmRNA表达水平变化 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 宫内感染孕鼠模型的建立 | 第40页 |
| 4.2 宫内感染对胎鼠及新生大鼠脑重及体重的影响 | 第40-41页 |
| 4.3 宫内感染致未成熟鼠脑白质损伤病理改变 | 第41页 |
| 4.4 宫内感染对未成熟脑反应性星形细胞胶质化影响 | 第41-42页 |
| 4.5 宫内感染/炎症对胎鼠及新生鼠脑组织炎症细胞因子表达的影响 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 第二部分 宫内感染导致未成熟鼠脑组织MicroRNA表达谱变化 | 第45-67页 |
| 1 前言 | 第45-47页 |
| 2 实验材料和方法 | 第47-53页 |
| 2.1 材料 | 第47-48页 |
| 2.2 实验方法 | 第48-53页 |
| 3 结果 | 第53-63页 |
| 3.1 miRNA芯片结果 | 第53-58页 |
| 3.2 Taqman荧光定量PCR验证 | 第58-63页 |
| 4 讨论 | 第63-66页 |
| 4.1 宫内感染/炎症后新生大鼠脑组织miRNA表达谱变化 | 第63-64页 |
| 4.2 miR-200家族在宫内感染/炎症后未成熟鼠脑组织中表达变化 | 第64-66页 |
| 5 结论 | 第66-67页 |
| 第三部分 microRNA调控未成熟星形细胞活化机制研究 | 第67-106页 |
| 1 前言 | 第67-69页 |
| 2 实验材料和方法 | 第69-84页 |
| 2.1 材料 | 第69-71页 |
| 2.2 实验方法 | 第71-84页 |
| 3 结果 | 第84-101页 |
| 3.1 星形胶质细胞的纯化培养和鉴定 | 第84-85页 |
| 3.2 CCK-8 | 第85页 |
| 3.3 感染/炎症对未成熟星形细胞miR-200b表达的影响 | 第85-86页 |
| 3.4 miR-200b对星形胶质细胞生物学功能的影响 | 第86-89页 |
| 3.5 miR-200b转染星形胶质细胞后炎症细胞因子变化 | 第89-90页 |
| 3.6 感染/炎症对未成熟星形胶质细胞中c-jun表达的影响 | 第90-93页 |
| 3.7 miR-200b调控c-jun蛋白表达 | 第93-94页 |
| 3.8 c-jun为miR-200b靶基因 | 第94-97页 |
| 3.9 sic-Jun单独转染及其与mir-200b共转后对脑星形细胞产生c-jun的影响 | 第97-101页 |
| 4 讨论 | 第101-105页 |
| 5 结论 | 第105-106页 |
| 全文结论 | 第106-108页 |
| 展望 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-116页 |
| 综述 | 第116-125页 |
| 参考文献 | 第122-125页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第125页 |
