| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 研究背景 | 第14-15页 |
| 1.2 课题来源与研究目的 | 第15-16页 |
| 1.2.1 课题来源 | 第15页 |
| 1.2.2 研究目的 | 第15-16页 |
| 1.3 国内外研究现状 | 第16-22页 |
| 1.3.1 产甲烷菌微生物特性的研究状况 | 第16页 |
| 1.3.2 生物性产甲烷的研究现状 | 第16-19页 |
| 1.3.3 有机物的降解生成甲烷的研究现状 | 第19-20页 |
| 1.3.4 MCR基因的研究现状 | 第20-22页 |
| 1.4 研究方案 | 第22-25页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第22-23页 |
| 1.4.2 研究流程与技术方法 | 第23-25页 |
| 1.5 本论文的独特性与创新点 | 第25-26页 |
| 1.5.1 细菌作用下煤中有机物向甲烷可转化性论证 | 第25页 |
| 1.5.2 mcrA基因测定法分析MPB菌 | 第25-26页 |
| 第二章 试验地含煤地层地下水水质特征 | 第26-31页 |
| 2.1 水文地质背景 | 第26-28页 |
| 2.1.1 场地概况 | 第26-27页 |
| 2.1.2 场地水文地质条件概况 | 第27-28页 |
| 2.2 煤矿地下水水化学特征 | 第28-30页 |
| 2.3 地下水水质与甲烷含量关系 | 第30-31页 |
| 第三章 碳源对比性的生物性产甲烷实验设计 | 第31-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第31-34页 |
| 3.1.1 实验药品 | 第31-33页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第33-34页 |
| 3.1.3 主要的实验器皿和工具 | 第34页 |
| 3.2 样品来源 | 第34页 |
| 3.3 碳源对比性实验设计 | 第34-35页 |
| 3.4 实验组别理化参数测量及方法 | 第35-36页 |
| 3.4.1 实验体系中pH测定 | 第35页 |
| 3.4.2 实验体系中氧化还原电位（Eh）测定 | 第35页 |
| 3.4.3 实验体系中小分子有机酸的测定 | 第35-36页 |
| 3.4.4 实验体系中气体的测定 | 第36页 |
| 3.5 气相色谱-质谱（GC-MS）综合分析 | 第36-38页 |
| 3.5.1 气相色谱-质谱（GC-MS）主要原理 | 第36-37页 |
| 3.5.2 样品制备 | 第37页 |
| 3.5.3 气相色谱-质谱（GC-MS）检测条件 | 第37-38页 |
| 第四章 生物性产甲烷实验结果分析与讨论 | 第38-57页 |
| 4.1 实验体系中pH值变化分析 | 第38-39页 |
| 4.2 实验体系中氧化还原电位（Eh）的变化分析 | 第39-40页 |
| 4.3 实验体系中小分子有酸种类及含量的变化 | 第40-43页 |
| 4.4 实验体系中气体含量的变化 | 第43-48页 |
| 4.5 GC-MS实验分析结果 | 第48-55页 |
| 4.5.1 各实验组GC-MS质谱图 | 第48-50页 |
| 4.5.2 GC-MS检测结果分析与讨论 | 第50-55页 |
| 4.6 小结 | 第55-57页 |
| 第五章 煤系地下水中产甲烷菌mcrA基因克隆的实验研究 | 第57-65页 |
| 5.1 实验材料 | 第57页 |
| 5.1.1 主要实验试剂 | 第57页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第57页 |
| 5.1.3 样品采集 | 第57页 |
| 5.2 实验方法 | 第57-60页 |
| 5.2.1 样品物化参数的测定 | 第57页 |
| 5.2.2 样品基因组DNA的提取 | 第57页 |
| 5.2.3 mcrA基因片段的扩增 | 第57-58页 |
| 5.2.4 mcrA基因的文库构建 | 第58-60页 |
| 5.2.5 测序基因的数据处理 | 第60页 |
| 5.3 结果分析 | 第60-65页 |
| 5.3.1 样品的水质参数 | 第60页 |
| 5.3.2 mcrA基因序列比对 | 第60-62页 |
| 5.3.3 测序及其系统发育分析 | 第62-65页 |
| 第六章 结论与展望 | 第65-67页 |
| 6.1 结论 | 第65-66页 |
| 6.2 展望 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第75-76页 |