| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 引言 | 第10-17页 |
| 1 鲟鱼概述 | 第10-11页 |
| ·鲟的分类地位和分类 | 第10页 |
| ·鲟鱼的资源状况 | 第10页 |
| ·施氏鲟形态及生态习性 | 第10-11页 |
| 2 鱼类免疫机制 | 第11-12页 |
| ·鱼类免疫系统 | 第11页 |
| ·鱼类胚胎时期免疫及抗氧化机制 | 第11-12页 |
| 3 雌、雄激素及其受体（ER、AR）概述 | 第12-14页 |
| 4 Kisspeptin基因对性别分化的作用 | 第14-15页 |
| 5 温度对鱼类性别分化的影响 | 第15-16页 |
| 6 研究的目的与意义 | 第16-17页 |
| 第一章 施氏鲟胚胎发育阶段可溶性蛋白、性激素含量及免疫相关指标变化 | 第17-26页 |
| 1 材料和方法 | 第17-18页 |
| ·材料 | 第17页 |
| ·方法 | 第17-18页 |
| 2 结果 | 第18-22页 |
| ·施氏鲟胚胎发育过程中可溶性蛋白浓度的变化规律 | 第18-19页 |
| ·胚胎发育期间非特异性免疫指标的变化 | 第19-21页 |
| ·胚胎发育期间性激素水平的变化 | 第21-22页 |
| 3 讨论 | 第22-26页 |
| ·胚胎发育过程中可溶性蛋白的变化 | 第22-23页 |
| ·胚胎发育过程中免疫相关酶的变化 | 第23-24页 |
| ·胚胎发育过程中性激素水平的变化 | 第24-26页 |
| 第二章 施氏鲟稚幼鱼生长阶段与性腺分化过程中性激素含量及性激素受体基因(ERα, ERβ, AR)表达变化 | 第26-37页 |
| 1 材料和方法 | 第26-28页 |
| ·实验用鱼 | 第26页 |
| ·实验试剂及仪器试剂以及仪器 | 第26页 |
| ·样品处理 | 第26-27页 |
| ·cDNA第一条链的合成 | 第27页 |
| ·定量引物合成 | 第27页 |
| ·实时定量PCR | 第27页 |
| ·数据分析 | 第27-28页 |
| 2 结果 | 第28-34页 |
| ·稚幼鱼生长阶段及性腺分化阶段性激素含量变化 | 第28-30页 |
| ·AR、ERα、ERβ 引物筛选结果 | 第30-31页 |
| ·AR、ERα、ERβ 基因在各组织表达分析 | 第31-32页 |
| ·稚幼鱼生长阶段AR、ERα 基因表达分析 | 第32页 |
| ·性腺分化阶段脑与性腺组织AR、ERα、ERβ 基因表达分析 | 第32-34页 |
| 3 讨论 | 第34-37页 |
| ·稚幼鱼生长阶段及性腺分化阶段性激素含量变化 | 第34页 |
| ·性腺分化阶段各相关基因表达 | 第34-37页 |
| 第三章 施氏鲟性腺分化期脑室注射KISS1、KISS2 多肽对性激素含量及性激素受体基因(ERα, ERβ, AR)表达的影响 | 第37-45页 |
| 1 材料和方法 | 第37-39页 |
| ·实验用鱼 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37页 |
| ·实验试剂及仪器试剂 | 第37页 |
| ·样品处理 | 第37-38页 |
| ·cDNA第一条链的合成 | 第38页 |
| ·定量引物合成 | 第38页 |
| ·实时定量PCR | 第38页 |
| ·数据分析 | 第38-39页 |
| 2 结果 | 第39-43页 |
| ·脑室注射kiss1、kiss2 对激素含量的影响 | 第39-41页 |
| ·脑室注射kiss1、kiss2 对脑和性腺各基因表达的影响 | 第41-43页 |
| 3 讨论 | 第43-45页 |
| ·kisspeptins对鱼类性腺分化的调控 | 第43-45页 |
| 小结 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
