| 内容摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 第一章 研究综述 | 第15-38页 |
| 第一节 蝙蝠冬眠能力的生物学概述 | 第15-25页 |
| ·蝙蝠概述 | 第15-20页 |
| ·冬眠概述 | 第20-22页 |
| ·蝙蝠冬眠能力的生物学概述 | 第22-25页 |
| 第二节 Leptin与哺乳动物冬眠的相关研究进展 | 第25-31页 |
| ·Leptin概述 | 第25-29页 |
| ·leptin与哺乳动物冬眠的相关研究 | 第29-31页 |
| 第三节 脂肪“三大分类”概述 | 第31-36页 |
| ·肥胖概述 | 第31-32页 |
| ·白色脂肪 | 第32-33页 |
| ·棕色脂肪 | 第33-34页 |
| ·Beige or Brite | 第34-36页 |
| 第四节 本文研究思路及主要研究方法 | 第36-38页 |
| ·研究思路及目的 | 第36-37页 |
| ·主要研究方法 | 第37-38页 |
| 第二章 大蹄蝠冬眠诱导机制研究 | 第38-52页 |
| 第一节 研究背景 | 第38-41页 |
| 第二节 材料与方法 | 第41-44页 |
| ·实验动物的获取及育肥 | 第41页 |
| ·无线信号发送器的植入 | 第41-42页 |
| ·数据的采集和处理 | 第42-44页 |
| 第三节 结果 | 第44-49页 |
| ·冬眠阵研究 | 第46页 |
| ·冬眠期间觉醒研究 | 第46-47页 |
| ·冬眠前后心率变化 | 第47-49页 |
| 第四节 讨论 | 第49-52页 |
| 第三章 Leptin通路介导的蝙蝠冬眠机制研究 | 第52-73页 |
| 第一节 研究背景 | 第52-55页 |
| 第二节 材料与方法 | 第55-61页 |
| ·实验动物的获取及育肥 | 第55页 |
| ·anti-OB-R1 shRNA慢病毒的构建和筛选 | 第55-58页 |
| ·anti-OB-R1 shRNA慢病毒介导的基因沉默活体分析 | 第58-59页 |
| ·原位杂交 | 第59-60页 |
| ·数据分析 | 第60-61页 |
| 第三节 结果 | 第61-70页 |
| ·anti-OB-R1 shRNA慢病毒的体外分析 | 第61-65页 |
| ·anti-OB-R1 shRNA慢病毒的体内研究 | 第65-68页 |
| ·慢病毒活体注射后下丘脑区域OB-R1基因表达量检测 | 第68-70页 |
| 第四节 讨论 | 第70-73页 |
| 第四章 白色脂肪棕样化的新动物模型研究 | 第73-86页 |
| 第一节 研究背景 | 第73-75页 |
| 第二节 材料与方法 | 第75-79页 |
| ·实验动物的获取 | 第75-76页 |
| ·冷环境暴露处理 | 第76页 |
| ·样品收集 | 第76-77页 |
| ·H&E染色和qPCR | 第77-79页 |
| 第三节 结果 | 第79-84页 |
| ·大蹄蝠白色脂肪出现棕样化 | 第79-81页 |
| ·延长暴露时间对棕样化的影响 | 第81-82页 |
| ·大足鼠耳蝠冷诱导后脂肪没有明显棕样化 | 第82-84页 |
| 第四节 讨论 | 第84-86页 |
| 第五章 结论与展望 | 第86-90页 |
| 第一节 结论 | 第86-89页 |
| 第二节 展望与不足 | 第89-90页 |
| 附录 | 第90-100页 |
| 附录1 主要的实验操作方法及经验交流 | 第90-99页 |
| 附录2 已发表或已投稿文章 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-119页 |
| 致谢 | 第119页 |
