| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-21页 |
| ·海洋来源多糖 | 第15-17页 |
| ·海洋微生物多糖 | 第15-16页 |
| ·海洋动物多糖 | 第16页 |
| ·海洋植物多糖 | 第16-17页 |
| ·褐藻多糖生物活性研究进展 | 第17-20页 |
| ·抗凝血、抗血栓活性 | 第17页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| ·免疫调节能力 | 第18-19页 |
| ·抗炎活性 | 第19页 |
| ·抗氧化活性 | 第19-20页 |
| ·本课题研究背景和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 铜藻多糖制备工艺研究 | 第21-26页 |
| 摘要 | 第21页 |
| ·材料 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·仪器 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-25页 |
| ·铜藻粗多糖提取 | 第22页 |
| ·葡萄糖标准曲线绘制 | 第22-23页 |
| ·单因素分析 | 第23-24页 |
| ·正交分析 | 第24-25页 |
| ·实验结果 | 第25页 |
| ·讨论 | 第25页 |
| ·结论 | 第25-26页 |
| 第三章 多糖分离纯化及基本性质测定 | 第26-30页 |
| 摘要 | 第26页 |
| ·实验材料 | 第26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-28页 |
| ·分离纯化 | 第26-27页 |
| ·中性单糖组成 | 第27页 |
| ·理化性质测定 | 第27-28页 |
| ·实验结果 | 第28-29页 |
| ·讨论 | 第29页 |
| ·结论 | 第29-30页 |
| 第四章 铜藻粗多糖体外抗氧化活性的研究 | 第30-34页 |
| 摘要 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30页 |
| ·仪器 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-32页 |
| ·铜藻多糖对 DPPH 自由基清除作用 | 第30页 |
| ·抗脂质过氧化能力的测定 | 第30-31页 |
| ·超氧阴离子自由基清除能力的测定 | 第31-32页 |
| ·铜藻多糖对 DPPH 自由基清除作用 | 第32页 |
| ·讨论 | 第32-33页 |
| ·结论 | 第33-34页 |
| 第五章 SHS 对 H2O2 诱导 RAW264.7 氧化损伤的保护作用研究 | 第34-48页 |
| ·材料和仪器 | 第34-35页 |
| ·仪器 | 第34页 |
| ·试剂 | 第34-35页 |
| ·材料 | 第35页 |
| ·主要溶液配制 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-39页 |
| ·细胞培养 | 第35-36页 |
| ·RAW264.7 细胞氧化损伤模型 | 第36页 |
| ·SHS 对 RAW264.7 细胞存活率影响 | 第36页 |
| ·SHS 对氧化损伤细胞生长影响 | 第36页 |
| ·SHS 对细胞氧化损伤保护作用 | 第36-38页 |
| ·RT-PCR | 第38-39页 |
| ·统计分析 | 第39页 |
| ·实验结果 | 第39-46页 |
| ·RAW264.7 细胞氧化损伤模型 | 第39-41页 |
| ·SHS 对 RAW264.7 细胞存活率影响 | 第41页 |
| ·SHS 对氧化损伤细胞生长影响 | 第41-42页 |
| ·SHS 对细胞氧化损伤保护作用 | 第42-46页 |
| ·讨论 | 第46-47页 |
| ·结论 | 第47-48页 |
| 第六章 SHS 对 RAW264.7 细胞免疫调节能力 | 第48-62页 |
| ·材料和仪器 | 第48-49页 |
| ·仪器 | 第48页 |
| ·试剂 | 第48-49页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·实验内容 | 第49-51页 |
| ·细胞培养 | 第49页 |
| ·免疫调节实验 | 第49-50页 |
| ·RT-PCR | 第50-51页 |
| ·实验结果 | 第51-58页 |
| ·讨论 | 第58-60页 |
| ·结论 | 第60-62页 |
| 第七章 结语与展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 附录 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第69页 |