| 摘要 | 第1-14页 |
| ABSTRACT | 第14-19页 |
| 符号说明 | 第19-20页 |
| 第一章 前言 | 第20-40页 |
| 1 多糖的生物活性研究 | 第20-27页 |
| ·内源性多糖的生物学意义 | 第20-22页 |
| ·多糖的免疫调节活性 | 第22-26页 |
| ·多糖的抗肿瘤活性 | 第26-27页 |
| ·多糖的其它活性 | 第27页 |
| 2 多糖的制备和结构研究 | 第27-34页 |
| ·多糖的制备 | 第27-28页 |
| ·多糖的结构和构象研究 | 第28-30页 |
| ·多糖的结构研究方法进展 | 第30-34页 |
| 3 多糖的结构修饰研究 | 第34-36页 |
| ·改变分子量 | 第34页 |
| ·硫酸化 | 第34-35页 |
| ·乙酰化 | 第35页 |
| ·羧甲基化 | 第35-36页 |
| 4 真菌多糖的研究概况 | 第36-37页 |
| 5 本课题研究的意义和目的 | 第37-40页 |
| 第二章 茶藨子木层孔菌多糖的提取工艺研究 | 第40-49页 |
| 1 材料 | 第40-41页 |
| ·试剂 | 第40页 |
| ·仪器 | 第40-41页 |
| 2 方法 | 第41-44页 |
| ·提取方法的确定 | 第41页 |
| ·正交实验确定最佳提取条件 | 第41-42页 |
| ·多糖的含量测定 | 第42-43页 |
| ·去蛋白 | 第43页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第43-44页 |
| ·脱色与分级 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-47页 |
| ·蒽酮-硫酸法测定多糖含量的标准曲线 | 第44页 |
| ·Folin-酚法测定蛋白质的标准曲线 | 第44-45页 |
| ·提取方法的确定 | 第45-46页 |
| ·正交实验确定最佳提取条件 | 第46-47页 |
| ·茶藨子木层孔菌多糖的提取、去蛋白、脱色与分级 | 第47页 |
| 4 讨论 | 第47-48页 |
| ·多糖的提取 | 第47-48页 |
| ·多糖的脱色 | 第48页 |
| ·多糖的去蛋白 | 第48页 |
| 5 小结 | 第48-49页 |
| 第三章 茶藨子木层孔菌多糖的分离纯化及理化性质研究 | 第49-56页 |
| 1 材料 | 第49-50页 |
| ·试剂 | 第49页 |
| ·仪器 | 第49-50页 |
| 2 方法 | 第50-52页 |
| ·茶藨子木层孔菌多糖的离子交换柱层析 | 第50页 |
| ·茶藨子木层孔菌多糖的凝胶柱层析 | 第50页 |
| ·纯度鉴别 | 第50页 |
| ·紫外光谱扫描 | 第50-51页 |
| ·分子量测定 | 第51页 |
| ·总糖含量和蛋白质含量测定 | 第51页 |
| ·溶解度测定 | 第51页 |
| ·颜色反应 | 第51页 |
| ·比旋光度测定 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52-54页 |
| ·柱层析分离纯化结果 | 第52-53页 |
| ·PRP的纯度 | 第53页 |
| ·PRP的紫外扫描光谱 | 第53页 |
| ·PRP的分子量 | 第53页 |
| ·PRP的总糖含量和蛋白质含量 | 第53-54页 |
| ·PRP的性状、溶解度与显色反应 | 第54页 |
| ·PRP的比旋光度 | 第54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| ·多糖的分离纯化 | 第54-55页 |
| ·多糖的纯度 | 第55页 |
| ·多糖的旋光度 | 第55页 |
| 5 小结 | 第55-56页 |
| 第四章 茶藨子木层孔菌多糖PRP的化学结构研究 | 第56-81页 |
| 1 材料 | 第56-57页 |
| ·试剂 | 第56页 |
| ·仪器 | 第56-57页 |
| 2 方法 | 第57-62页 |
| ·单糖组成分析 | 第57-58页 |
| ·高碘酸氧化与Smith降解 | 第58-60页 |
| ·甲基化分析 | 第60-62页 |
| ·缓和酸水解 | 第62页 |
| ·红外光谱分析 | 第62页 |
| ·核磁共振波谱分析 | 第62页 |
| 3 结果 | 第62-77页 |
| ·单糖的组成 | 第62-63页 |
| ·高碘酸氧化 | 第63-65页 |
| ·Smith降解 | 第65-66页 |
| ·甲基化分析 | 第66-70页 |
| ·IR分析 | 第70-71页 |
| ·NMR分析 | 第71-77页 |
| 4 讨论 | 第77-80页 |
| ·单糖组成分析 | 第78页 |
| ·高碘酸氧化和Smith降解 | 第78-79页 |
| ·甲基化分析 | 第79页 |
| ·NMR | 第79-80页 |
| 5 小结 | 第80-81页 |
| 第五章 茶藨子木层孔菌多糖PRP的体外抗肿瘤活性和免疫活性研究 | 第81-92页 |
| 1 材料 | 第81-83页 |
| ·试剂 | 第81页 |
| ·动物和细胞株 | 第81页 |
| ·仪器 | 第81-82页 |
| ·溶液的配制 | 第82-83页 |
| 2 方法 | 第83-85页 |
| ·PRP的体外抗肿瘤活性研究 | 第83-84页 |
| ·PRP的免疫活性测定 | 第84-85页 |
| ·数据处理 | 第85页 |
| 3 结果 | 第85-90页 |
| ·PRP的体外抗肿瘤活性 | 第85-88页 |
| ·PRP的免疫活性 | 第88-90页 |
| 4 讨论 | 第90-91页 |
| ·多糖的抗肿瘤作用 | 第90页 |
| ·多糖的免疫作用 | 第90-91页 |
| 5 小结 | 第91-92页 |
| 第六章 茶藨子木层孔菌多糖PRP硫酸化衍生物的制备与结构分析 | 第92-104页 |
| 1 材料 | 第92-93页 |
| ·试剂 | 第92页 |
| ·仪器 | 第92-93页 |
| 2 方法 | 第93-95页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的制备 | 第93-94页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的分子量测定 | 第94页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的硫酸基含量测定 | 第94-95页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的旋光度测定 | 第95页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的紫外光谱扫描 | 第95页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的红外光谱分析 | 第95页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的核磁共振波谱分析 | 第95页 |
| 3 结果 | 第95-102页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的制备 | 第95-96页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的分子量 | 第96页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的硫酸基含量 | 第96-97页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的比旋度 | 第97页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的UV光谱分析 | 第97页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的IR分析 | 第97-98页 |
| ·PRP硫酸化衍生物的~(13)C NMR分析 | 第98-102页 |
| 4 讨论 | 第102-103页 |
| ·多糖的硫酸化 | 第102页 |
| ·硫酸基含量测定 | 第102页 |
| ·硫酸化衍生物的比旋度 | 第102页 |
| ·IR | 第102-103页 |
| ·NMR | 第103页 |
| 5 小结 | 第103-104页 |
| 第七章 茶藨子木层孔菌多糖PRP硫酸化衍生物的生物活性研究 | 第104-115页 |
| 1 材料 | 第104-105页 |
| ·试剂 | 第104页 |
| ·动物和细胞株 | 第104页 |
| ·仪器 | 第104-105页 |
| ·溶液的配制 | 第105页 |
| 2 方法 | 第105-106页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物的体外抗肿瘤活性研究 | 第105页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物的免疫活性研究 | 第105页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物对内皮细胞及血管生成的影响 | 第105-106页 |
| 3 结果 | 第106-112页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物对人肝癌细胞HepG2的影响 | 第106-107页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物的免疫活性 | 第107-109页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物对内皮细胞及血管生成的作用 | 第109-112页 |
| 4 讨论 | 第112-113页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物对肿瘤细胞和淋巴细胞的影响 | 第112页 |
| ·PRP及硫酸化衍生物对内皮细胞的影响 | 第112-113页 |
| ·斑马鱼模型实验 | 第113页 |
| 5 小结 | 第113-115页 |
| 总结与展望 | 第115-117页 |
| 1 论文主要结论 | 第115-116页 |
| 2 展望 | 第116-117页 |
| 附图 | 第117-130页 |
| 参考文献 | 第130-152页 |
| Structural characterization of an active polysaccharide from Phellinus ribis | 第152-159页 |
| Preparation,characterization and biological activities of chemically sulfated polysaccharide from Phellinus ribis | 第159-174页 |
| 致谢 | 第174-176页 |
| 博士期间发表的论文 | 第176-177页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第177页 |
