| 中文摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分 文献研究 | 第16-45页 |
| 第一章 肝纤维化的病因及发病机制 | 第16-24页 |
| 第二章 肝纤维化的诊断与治疗 | 第24-34页 |
| 第三章 肝纤维化的动物模型研究 | 第34-38页 |
| 第四章 肝星状细胞凋亡与肝纤维化逆转的关系 | 第38-42页 |
| 第五章 纤溶系统与肝纤维化 | 第42-45页 |
| 第二部分 实验研究 | 第45-80页 |
| 实验一 逆纤方抗肝纤维化的体内外实验研究 | 第45-62页 |
| 第一章 对肝纤维化大鼠血清肝纤四项及HyP的影响 | 第45-52页 |
| 1 实验目的 | 第45页 |
| 2 实验材料 | 第45-46页 |
| ·实验动物 | 第45页 |
| ·实验药物 | 第45页 |
| ·实验试剂 | 第45页 |
| ·实验仪器 | 第45-46页 |
| 3 实验方法 | 第46页 |
| ·造模与分组给药 | 第46页 |
| ·血清透明质酸(HA)、层粘连蛋白(LN)、Ⅲ型前胶原(PCⅢ)、Ⅳ型胶原检测 | 第46页 |
| ·血清HA、LN、PCⅢ、Ⅳ型胶原检测 | 第46页 |
| ·肝组织羟脯胺酸检测 | 第46页 |
| ·统计方法 | 第46页 |
| 4 实验结果 | 第46-49页 |
| 5 讨论 | 第49-52页 |
| 第二章 对肝纤维化大鼠肝组织形态学的影响 | 第52-57页 |
| 1 实验目的 | 第52页 |
| 2 实验材料 | 第52页 |
| ·实验动物 | 第52页 |
| ·实验药物 | 第52页 |
| ·实验试剂 | 第52页 |
| ·实验器材 | 第52页 |
| 3 实验方法 | 第52-54页 |
| ·造模与分组给药 | 第52页 |
| ·组织取材及固定 | 第52-53页 |
| ·组织脱水透明 | 第53页 |
| ·载玻片的处理 | 第53页 |
| ·组织切片 | 第53页 |
| ·HE染色和Masson染色 | 第53页 |
| ·a-SMA、Ⅰ型胶原免疫组化 | 第53-54页 |
| 4 实验结果 | 第54-55页 |
| ·肉眼观察 | 第54页 |
| ·镜检结果 | 第54-55页 |
| 5 讨论 | 第55-57页 |
| 第三章 对HSC-T6细胞增殖的实验研究 | 第57-62页 |
| 1 实验目的 | 第57页 |
| 2 实验材料 | 第57页 |
| ·细胞 | 第57页 |
| ·实验药物 | 第57页 |
| ·实验试剂 | 第57页 |
| ·实验仪器 | 第57页 |
| 3 实验方法 | 第57-61页 |
| ·细胞复苏 | 第57页 |
| ·细胞培养 | 第57-58页 |
| ·细胞毒性实验 | 第58-61页 |
| 4 讨论 | 第61-62页 |
| 实验二 逆纤方对大鼠及体外培养的HSC凋亡及Fas/FasL mRNA表达的影响 | 第62-73页 |
| 第一章 对HSC-T6细胞凋亡的影响 | 第62-66页 |
| 1 实验目的 | 第62页 |
| 2 实验材料 | 第62页 |
| ·细胞 | 第62页 |
| ·实验药物 | 第62页 |
| ·实验试剂 | 第62页 |
| ·实验仪器 | 第62页 |
| 3 实验方法 | 第62-64页 |
| ·Annexin V/PI双染结合流式细胞仪分析凋亡细胞基本原理 | 第62页 |
| ·细胞复苏 | 第62页 |
| ·检测步骤 | 第62-63页 |
| ·检测结果 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 第二章 对肝纤维化大鼠及体外培养的HSC-T6 Fas/FasL mRNA表达的影响 | 第66-73页 |
| 1 实验目的 | 第66页 |
| 2 实验材料 | 第66页 |
| ·实验动物 | 第66页 |
| ·实验药物 | 第66页 |
| ·实验试剂 | 第66页 |
| ·实验器材 | 第66页 |
| 3 实验方法 | 第66-69页 |
| ·造模与分组给药 | 第66页 |
| ·组织取材及固定 | 第66页 |
| ·肝组织RNA提取 | 第66-67页 |
| ·体外培养的HSC-T6 RNA提取 | 第67-68页 |
| ·逆转录反应 | 第68页 |
| ·Real-time PCR反应 | 第68-69页 |
| 4 实验结果 | 第69-72页 |
| 5 讨论 | 第72-73页 |
| 实验三 对HSC-T6细胞uPA、PAI-1、TIMP-1及MMP-13 mRNA表达的影响 | 第73-80页 |
| 第一章 免疫组化法观察逆纤方对肝纤维化大鼠uPA、PAI-1mRNA表达的影响 | 第73-75页 |
| 1 实验目的 | 第73页 |
| 2 实验材料 | 第73页 |
| ·实验动物 | 第73页 |
| ·实验药物 | 第73页 |
| ·实验试剂 | 第73页 |
| ·实验器材 | 第73页 |
| 3 实验方法 | 第73-74页 |
| 4 实验结果 | 第74页 |
| 5 讨论 | 第74-75页 |
| 第二章 对HSC-T6细胞uPA、PAI-1、TIMP-1及MMP-13 mRNA表达的影响 | 第75-80页 |
| 1 实验目的 | 第75页 |
| 2 实验材料 | 第75页 |
| ·实验细胞 | 第75页 |
| ·实验药物 | 第75页 |
| ·实验试剂 | 第75页 |
| ·实验器材 | 第75页 |
| 3 实验方法 | 第75-76页 |
| ·体外培养的HSC-T6 RNA提取 | 第75页 |
| ·逆转录反应 | 第75页 |
| ·Real-time PCR反应 | 第75-76页 |
| 4 实验结果 | 第76-77页 |
| 5 讨论 | 第77-80页 |
| 结语 | 第80-82页 |
| 一、实验结论 | 第80页 |
| 二、主要创新 | 第80页 |
| 三、存在问题 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-88页 |
| 附录 | 第88-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
