农杆菌介导草酸氧化酶（OXO）基因转化向日葵的研究
| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 1 引言 | 第9-20页 |
| ·向日葵组织培养研究进展 | 第9-12页 |
| ·不同类型的外植体对植株再生影响 | 第9页 |
| ·不同基因型对离体培养影响 | 第9-10页 |
| ·外植体生理状况对离体培养影响 | 第10页 |
| ·外源激素对向日葵植株再生影响 | 第10-11页 |
| ·向日葵组织培养存在的问题及解决的对策 | 第11-12页 |
| ·向日葵遗传转化研究进展 | 第12-14页 |
| ·向日葵遗传转化的方法 | 第12-13页 |
| ·影响向日葵遗传转化的因素 | 第13-14页 |
| ·向日葵基因工程的现状及前景 | 第14页 |
| ·向日葵菌核病的研究概况 | 第14-17页 |
| ·病菌的侵染过程 | 第15页 |
| ·致病的生理生化机制 | 第15-16页 |
| ·向日葵菌核病的抗性遗传机制 | 第16页 |
| ·向日葵菌核病的抗病育种研究 | 第16-17页 |
| ·草酸氧化酶基因（OXO）及其转基因研究概况 | 第17-19页 |
| ·草酸（OA）的生物合成与分解 | 第17-18页 |
| ·OXO 的组成、结构及其酶学研究 | 第18页 |
| ·OXO 基因在植物抗毒素基因工程中的应用 | 第18-19页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-29页 |
| ·材料 | 第20-24页 |
| ·根癌农杆菌及其质粒 | 第20页 |
| ·培养基 | 第20-22页 |
| ·生化试剂 | 第22-23页 |
| ·溶液的配制 | 第23-24页 |
| ·仪器 | 第24页 |
| ·培养条件 | 第24页 |
| ·农杆菌介导向日葵转基因 | 第24-27页 |
| ·向日葵茎尖遗传转化体系的建立 | 第24-25页 |
| ·根癌农杆菌介导转化向日葵茎尖 | 第25-27页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第27-29页 |
| ·CTAB 法提取植物总 DNA | 第27页 |
| ·质粒的提取 | 第27-28页 |
| ·抗性苗的 PCR 检测 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-36页 |
| ·转化外植体的选择 | 第29-30页 |
| ·卡那霉素(Kan)选择压的筛选结果 | 第30页 |
| ·头孢霉素（Cef）抑菌浓度选择 | 第30-32页 |
| ·不同农杆菌感染浓度和感染时间对茎尖转化的影响 | 第32页 |
| ·乙酰丁香酮的浓度对转化的影响 | 第32-33页 |
| ·共培养时间对转化的的影响 | 第33-34页 |
| ·生根培养基中激素的选择 | 第34-35页 |
| ·Kan 转化子的筛选与植株再生 | 第35-36页 |
| ·转基因植株的 PCR 检测 | 第36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| ·影响向日葵遗传转化的因素 | 第36-38页 |
| ·转化受体类型的影响 | 第36-37页 |
| ·共培养时间的影响 | 第37页 |
| ·乙酰丁香酮对根癌农杆菌介导向日葵遗传转化的影响 | 第37-38页 |
| ·向日葵基因转化受体系统建立中常遇的问题及对策 | 第38-40页 |
| ·转化率低 | 第38页 |
| ·试管苗玻璃化现象的解决方法 | 第38-39页 |
| ·试管苗褐化现象的解决方法 | 第39页 |
| ·试管苗的移栽 | 第39-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 作者简介 | 第48页 |
