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人肺癌单链抗体库的构建、筛选及其抗体结构与功能的研究

摘要第1-11页
ABSTRACT第11-13页
主要英文缩写词第13-14页
第一篇 文献综述部分第14-64页
 第一章 抗体的结构与功能第14-33页
  1 抗体的分子结构第14-23页
   1.1 抗体分子的基本结构第14-16页
   1.2 抗体分子的功能区结构第16-18页
   1.3 免疫球蛋白超家族第18-19页
   1.4 免疫球蛋白的不均一性第19-23页
  2 抗体分子的基因结构和重排第23-31页
   2.1 抗体基因的基本结构第23-27页
   2.2 可变区基因的重组及其机制第27-30页
   2.3 抗体多样性的来源第30-31页
  3 抗体的生物学功能第31-33页
   3.1 特异性结合相应抗原第31页
   3.2 效应功能第31-32页
   3.3 通过胎盘第32-33页
 第二章 抗体库技术研究进展第33-49页
  1 噬菌体抗体库技术第34-41页
   1.1 噬菌体展示技术系统第34-35页
   1.2 噬菌体抗体技术的操作方法第35-40页
   1.3 噬菌体展示技术的特点与优势第40-41页
  2 核糖体展示抗体库第41-49页
   2.1 核糖体展示技术的发展第42-43页
   2.2 核糖体展示技术的原理第43-49页
 第三章 血管内皮生长因子受体-2及其信号转导作用的研究进展第49-55页
  1 KDR在血管生成中起主导作用第50-51页
  2 KDR介导肿瘤血管生成第51页
  3 KDR信号转导与血管生成及维持第51-53页
   3.1 KDR信号转导与内皮细胞存活第51-52页
   3.2 KDR信号转导与内皮细胞增殖第52页
   3.3 KDR信号转导与内皮细胞迁移第52-53页
   3.4 KDR信号转导与内皮细胞渗透性改变第53页
  4 以KDR及其通路为靶点的抗肿瘤治疗第53-54页
  5 结语第54-55页
 参考文献第55-64页
第二篇 试验部分第64-142页
 第一章 概述第64-67页
 第二章 肺癌患者外周血淋巴细胞的分离与CDNA的合成第67-73页
  1 试验策略第67-68页
  2 试验材料与设备第68-69页
   2.1 试验材料第68页
   2.2 试验设备第68-69页
  3 试验方法第69-71页
   3.1 从人外周血分离淋巴细胞第69页
   3.1 总细胞RNA的提取第69-70页
   3.3 RNA甲醛变性电泳第70页
   3.4 cDNA的合成第70-71页
  4 试验结果与讨论第71-72页
   4.1 测定样品在260nm和280nm的吸收值确定RNA的质量第71页
   4.2 血样和RNA的质量控制第71-72页
  参考文献第72-73页
 第三章 肺癌人源单链抗体库的构建及库质量的评定第73-102页
  1 构建策略第74-75页
  2 试验材料与设备第75-79页
   2.1 试验材料第75-79页
   2.2 主要试验设备第79页
  3 试验方法第79-87页
   3.1 PCR克隆抗体基因片段第79页
   3.2 V_H-linker的PCR扩增第79-80页
   3.3 Vκ的PCR扩增第80页
   3.4 Vλ的PCR扩增第80页
   3.5 Cκ的PCR扩增第80-81页
   3.6 单链抗体(scFv)基因的拼接第81-83页
   3.7 从琼脂糖胶中回收DNA片段第83-84页
   3.8 连接反应第84页
   3.9 用氯化钙法制备感受态细胞第84-85页
   3.10 转化第85页
   3.11 质粒提取操作步骤第85-86页
   3.12 测序与序列分析第86页
   3.13 用DNA fingerprinting技术对单链抗体库多样性进行分析第86-87页
   3.14 单链抗体库库容量的计算方法第87页
  4 试验结果与讨论第87-99页
   4.1 关于引物第87-88页
   4.2 V_H-linker、Vκ、Vλ和Cκ的PCR扩增结果第88-90页
   4.3 V_H-linker基函与Vκ基因的拼接和V_H-linker基因与Vλ基因、Cκ基因的拼接第90-92页
   4.4 DNA fingerprinting技术对单链抗体库多样性进行分析及库容量的计算第92-93页
   4.5 序列分析第93-99页
  5 小结第99-100页
  参考文献第100-102页
 第四章 运用核糖体展示技术对肺癌人源单链抗体库的筛选研究第102-116页
  1 筛选策略第103-104页
  2 试验材料与设备第104-106页
   2.1 试验材料第104-106页
   2.2 试验设备第106页
  3 试验方法第106-109页
   3.1 抗原-磁珠的制备第106-107页
   3.2 运用核糖体展示系统对单链抗体库进行筛选第107-108页
   3.3 连接反应第108页
   3.4 感受态细胞的制备第108页
   3.5 转化第108-109页
   3.6 质粒提取第109页
   3.7 测序和序列分析第109页
   3.8 所有试验所需要分子生物学溶液的配制第109页
  4 试验结果与讨论第109-113页
   4.1 体外无细胞翻译系统第109页
   4.2 镁离子浓度和温度第109-110页
   4.3 筛选效果第110页
   4.3 序列分析第110-113页
  5 小结第113-114页
  参考文献第114-116页
 第五章 抗VEGFR-2单链抗体的克隆、表达及其功能分析第116-128页
  1 试验材料与设备第116-118页
   1.1 试验材料第116-118页
   1.2 试验设备第118页
  2 试验方法第118-124页
   2.1 Anti-VEGFR-2 scFv基因的扩增第118-119页
   2.2 连接反应、转化反应、阳性重组子的筛选和重组质粒的提取第119页
   2.3 重组质粒的酶切第119页
   2.4 表达载体的酶切第119-120页
   2.5 连接第120页
   2.6 感受态细胞的制备与转化第120页
   2.7 阳性质粒的筛选第120页
   2.8 SDS-PAGE凝胶电泳第120-121页
   2.9 目的蛋白表达量的测定第121页
   2.10 表达产物的分离、纯化和复性第121-122页
   2.11 纯化Anti-VEGFR-2单链抗体的含量测定第122页
   2.12 抗体效价测定第122-123页
   2.13 抗体亲和力的测定第123页
   2.14 抗体亲和力测定结果计算第123-124页
  3 试验结果与讨论第124-125页
   3.1 Anti-VEGFR-2单链抗体在大肠杆菌BL21中的诱导表达第124页
   3.2 Anti-VEGFR-2单链抗体效价和抗体亲和力的检测第124-125页
  4 小结第125-126页
  参考文献第126-128页
 第六章 抗VEGFR-2单链抗体的同源模建第128-133页
  1 方法第129-130页
   1.1 预测工具第129页
   1.2 结果显示第129页
   1.3 分析过程第129-130页
  2 结果与讨论第130-131页
  3 小结第131-132页
  参考文献第132-133页
 第七章 原子力显微镜对抗VEGFR-2单链抗体与抗原VEGFR-2相互作用的表征第133-142页
  1 AFM简介第133-135页
   1.1 AFM特点第133-134页
   1.2 AFM原理第134页
   1.3 AFM扫描技术要求第134-135页
  2 材料与设备第135页
   2.1 试验材料第135页
   2.2 试验设备第135页
  3 试验方法第135-136页
   3.1 云母片的前处理第135页
   3.2 单链抗体溶液的吸收第135-136页
   3.3 单链抗体-抗原免疫复合物的观察第136页
   3.4 原子力显微镜观察第136页
  4 结果与讨论第136-139页
  5 小结第139页
  参考文献第139-142页
总结、创新点及后续研究展望第142-143页
附录一第143-144页
附录二第144-145页
附录三第145-149页
攻读博士学位期间发表及待发表的论文第149-150页
致谢第150页

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