| 论文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第一部分 研究综述 | 第17-34页 |
| 一 动脉粥样硬化的发生机制 | 第17-19页 |
| 二 肺炎衣原体感染与AS | 第19-26页 |
| 三 鞘氨醇激酶的研究进展 | 第26-29页 |
| 四 TOLL样受体的研究进展 | 第29-30页 |
| 五 黄芩苷的研究进展 | 第30-31页 |
| 六 中医对AS的认识 | 第31-32页 |
| 七 本研究的设想与意义 | 第32-34页 |
| 第二部分 实验研究 | 第34-55页 |
| 一 肺炎衣原体(CPN)的培养及感染HUVEC | 第34-37页 |
| 1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 2 结果 | 第36-37页 |
| ·倒置显微镜下观察CPN在HUVEC内的生长 | 第36-37页 |
| ·姬姆萨染色观察CPN在HUVEC内的生长 | 第37页 |
| ·荧光标记观察CPN在HUVEC内的生长 | 第37页 |
| 二 黄芩苷对HUVEC增殖的影响 | 第37-39页 |
| 三 黄芩苷对CPN诱导的CD54、CD106及TNF-α、IL-8、IL-1的影响 | 第39-45页 |
| 1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 2 结果 | 第41-45页 |
| ·黄芩苷对CD54、CD106的影响 | 第41页 |
| ·黄芩苷对TNF-α的影响 | 第41页 |
| ·黄芩苷对可溶性CD54、IL-8的影响 | 第41-42页 |
| ·IL-1的水平 | 第42-45页 |
| 四 黄芩苷对E-选择素的影响 | 第45页 |
| 五 黄芩苷直接抗CPN增殖作用 | 第45-47页 |
| 六 黄芩苷对TOLL样受体的影响 | 第47-51页 |
| ·材料与仪器 | 第47-48页 |
| ·细胞的CPN感染及细胞总RNA的提取 | 第48-49页 |
| ·RT-PCR检测TLR2mRNA、TLR4mRNA的表达 | 第49页 |
| ·TLR2蛋白的流式细胞仪检测 | 第49-50页 |
| 2 结果 | 第50-51页 |
| ·感染肺炎衣原体的HUVEC TLR2mRNA和TLR4mRNA的表达 | 第50页 |
| ·黄芩苷对肺炎衣原体诱导的TLR2蛋白表达的影响 | 第50-51页 |
| 七 CPN感染HUVEC鞘氨醇激酶mRNA的表达与时间的关系 | 第51-53页 |
| ·材料与仪器 | 第51页 |
| ·CPN感染HUVEC时间与鞘氨醇激酶mRNA表达的关系 | 第51页 |
| ·实时荧光RT—PCR检测鞘氨醇激酶mRNA | 第51-52页 |
| 2.结果 | 第52-53页 |
| 八 黄芩苷对鞘氨醇激酶mRNA表达的影响 | 第53页 |
| 九 黄芩苷预处理对鞘氨醇激酶mRNA表达的影响 | 第53-55页 |
| 第三部分 讨论 | 第55-64页 |
| 结语 | 第64-65页 |
| 今后的研究设想和展望 | 第65-66页 |
| 附图 | 第66-76页 |
| 参考文献 | 第76-83页 |
| 英文缩写 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
