| 研究生导师和指导小组成员介绍 | 第4-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 主要符号表 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-16页 |
| 实验材料与方法 | 第16-38页 |
| 1.实验材料 | 第16-21页 |
| 1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.2 手术器械及实验仪器 | 第16-18页 |
| 1.3 实验耗材 | 第18页 |
| 1.4 实验试剂 | 第18-20页 |
| 1.5 主要溶液配制 | 第20-21页 |
| 2.实验方法 | 第21-38页 |
| 2.1 鼠尾基因鉴定法鉴定SP敲除小鼠 | 第21-24页 |
| 2.2 C57BL/6 与SP敲除小鼠角膜上皮损伤模型的建立及处理 | 第24-27页 |
| 2.3 实时定量-PCR (PT-PCR)检测角膜上皮组织中相关基因表达 | 第27-30页 |
| 2.4 角膜神经染色 | 第30-31页 |
| 2.5 流式细胞仪分析（Flow cytometer assay） | 第31-32页 |
| 2.6 免疫荧光染色 | 第32-34页 |
| 2.7 正常小鼠免疫细胞清除及角膜上皮损伤模型的建立及处理 | 第34页 |
| 2.8 小鼠外周血免疫细胞流式细胞仪分析 | 第34-35页 |
| 2.9 Real-time PCR检测促神经营养因子 | 第35-36页 |
| 2.10 酶联免疫吸附测定(ELISA) | 第36-38页 |
| 结果 | 第38-52页 |
| 3.1 SP敲除小鼠的鉴定 | 第38页 |
| 3.2 SP敲除小鼠角膜神经分布 | 第38-40页 |
| 3.3 SP敲除小鼠角膜上皮损伤修复 | 第40-41页 |
| 3.4 SP敲除小鼠角膜上皮神经营养因子的表达 | 第41-42页 |
| 3.5 阻断SP-NK1R信号通路抑制角膜神经再生 | 第42-43页 |
| 3.6 SP-NK1R信号通路调控角膜损伤后中性粒细胞的迁移 | 第43-44页 |
| 3.7 中性粒细胞清除显著延迟角膜神经再生 | 第44-48页 |
| 3.8 SP敲除小鼠角膜损伤后神经再生相关基因的表达 | 第48页 |
| 3.9 中性粒细胞分泌NGF调控神经再生 | 第48-52页 |
| 讨论 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
