第一章 前言 | 第1-32页 |
一、 辐射生物学研究概况: | 第13-19页 |
二、 重离子辐射 | 第19-25页 |
(一) 重离子辐射的生物学特征 | 第19-22页 |
(二) 重离子辐射引起DNA损伤的具体特征 | 第22-25页 |
三、 低能重离子的研究进展 | 第25-30页 |
(一) 低能辐射与低能重离子生物学效应研究的兴起 | 第25-26页 |
(二) 低能重离子辐射的生物学特征 | 第26-27页 |
(三) 低能重离子生物学研究进展 | 第27-30页 |
四、 研究的目的和意义 | 第30-32页 |
第二章 低能重离子引起的DNA链断裂的研究 | 第32-66页 |
第一节 材料与方法 | 第34-43页 |
一、 实验材料 | 第34-36页 |
(一) DNA样本 | 第34页 |
(二) 主要试剂及来源 | 第34-35页 |
(三) 实验常用溶液及配方: | 第35-36页 |
二、 实验方法 | 第36-43页 |
(一) 质粒的小量制备 | 第36-37页 |
(二) 辐射样品的准备 | 第37-38页 |
(三) 离子注入 | 第38-40页 |
(四) 离子注入剂量换算(低剂量的理由) | 第40-41页 |
(五) 样品洗脱、洗脱率测定 | 第41页 |
(六) 质粒DNA损伤(DSB and SSB)的测定 | 第41-42页 |
(七) 剂量效应曲线的拟合 | 第42-43页 |
第二节 结果 | 第43-57页 |
一、 实验条件的合理性分析 | 第43-46页 |
(一) 不同的干燥方式对DNA的损伤比较 | 第43-44页 |
(二) 离子注入对洗脱率的影响 | 第44-46页 |
二、 30keV N~+引起的DNA的链断裂(DSB、DSB)分析 | 第46-53页 |
(一) 引起螺旋分子构相变化 | 第46-47页 |
(二) 引起线性质粒分子的丢失 | 第47-49页 |
(三) 30keV N~+引起质粒分子链断裂的可能模式 | 第49-50页 |
(四) 引起质粒分子链断裂的定量分析 | 第50-52页 |
(五) 30keV N~+的屏蔽效应分析 | 第52-53页 |
三、 不同能量N~+引起质粒DNA链断裂的比较 | 第53-57页 |
(一) 100keV N~+引起的DNA的链断裂(DSB、SSB)分析 | 第53-54页 |
(二) 200keV N~+引起的DNA的链断裂(DSB、SSB)分析 | 第54-55页 |
(三) 30、100、200keV N~+引起的DNA的链断裂比较 | 第55-57页 |
第三节 讨论 | 第57-66页 |
一、 低能N~+注入引起DNA断裂的机制 | 第57-60页 |
二、 屏蔽效应 | 第60-63页 |
三、 低能低剂量下的DNA断裂 | 第63-66页 |
第三章 低能重粒子诱发基因突变谱的研究 | 第66-91页 |
第一节 材料与方法 | 第68-74页 |
一、 实验材料 | 第68-69页 |
(一) 含1ac Z基因的DNA样本的选择和宿主菌 | 第68-69页 |
(二) 试剂及来源 | 第69页 |
(三) 试验常用溶液及配方 | 第69页 |
二、 实验方法 | 第69-74页 |
(一) 感受态细胞的制备 | 第69-70页 |
(二) RF型M13mp18转染感受态JM105细胞 | 第70-71页 |
(三) 噬菌体原种的制备 | 第71页 |
(四) M13噬菌体RF型双链DNA的大规模制备 | 第71页 |
(五) 辐射样品的准备 | 第71页 |
(六) C~+离子辐射 | 第71-72页 |
(七) DNA的洗脱及突变体筛选 | 第72-73页 |
(八) 靶基因序列测定 | 第73-74页 |
第二节 结果 | 第74-84页 |
一、 突变类型分析 | 第74-76页 |
二、 替换突变的类型和分布 | 第76-79页 |
三、 缺失突变的类型和分布 | 第79-81页 |
四、 碳粒子引起突变在靶基因1acZα上的分布 | 第81-84页 |
第三节 讨论 | 第84-91页 |
一、 碱基替换特点 | 第84-86页 |
二、 高频重复碱基的缺失 | 第86-89页 |
三、 序列分布特点 | 第89-91页 |
研究总结 | 第91-93页 |
参考文献 | 第93-108页 |