| 前言 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-7页 |
| 文献综述 | 第7-26页 |
| 第一章 中华绒螯蟹与锯齿华溪蟹的生物学特性 | 第7-14页 |
| 第二章 中华绒螯蟹“颤抖病”的研究进展 | 第14-20页 |
| 第三章 甲壳动物非特异性免疫的研究进展 | 第20-26页 |
| 试验部分 | 第26-50页 |
| 第一章 用河蟹“颤抖病”人工感染锯齿华溪蟹 | 第26-35页 |
| 1． 材料和方法 | 第26-27页 |
| 1．1 试验动物 | 第26页 |
| 1．2 病毒的提取 | 第26-27页 |
| 1．3 河蟹“颤抖病”病毒人工接种石蟹及传代 | 第27页 |
| 1．4 回归试验 | 第27页 |
| 1．5 组织切片制片及光学显微镜观察 | 第27页 |
| 1．6 超薄切片制片及电镜观察 | 第27页 |
| 2． 结果 | 第27-32页 |
| 2．1 石蟹蟹接种后的症状 | 第27-28页 |
| 2．2 回归健康河蟹 | 第28页 |
| 2．3 组织病理变化 | 第28-31页 |
| 2．4 电镜观察 | 第31-32页 |
| 3． 讨论 | 第32-34页 |
| 英文摘要 | 第34-35页 |
| 第二章 河蟹“颤抖病”病毒在动物模型内的增殖特性及药物筛选试验 | 第35-42页 |
| 1． 材料和方法 | 第35-36页 |
| 1．1 试验动物 | 第35页 |
| 1．2 种毒处理 | 第35-36页 |
| 1．3 温度对病毒增殖的影响 | 第36页 |
| 1．4 接种途径对病毒感染的影响 | 第36页 |
| 1．5 半数致死量的测定 | 第36页 |
| 1．6 病毒对理化因子的敏感性测定 | 第36页 |
| 1．7 药物筛选试验 | 第36页 |
| 2． 结果 | 第36-39页 |
| 2．1 不同温度下接种的石蟹死亡情况 | 第36-37页 |
| 2．2 不同的感染途径 | 第37页 |
| 2．3 LD_（50）的测定 | 第37页 |
| 2．4 病毒对理化因子的抵抗力 | 第37-38页 |
| 2．5 药物筛选实验 | 第38-39页 |
| 3． 讨论 | 第39-41页 |
| 英文摘要 | 第41-42页 |
| 第三章 河蟹“颤抖病”病毒的分离纯化及在锯齿华溪蟹体内的抗原定位 | 第42-50页 |
| 1． 材料和方法 | 第42-43页 |
| 1．1 病毒的分离和纯化 | 第42-43页 |
| 1．1．1 病毒悬液的制备 | 第42页 |
| 1．1．2 病毒的浓缩 | 第42页 |
| 1．1．3 超速离心 | 第42页 |
| 1．1．4 25％的蔗糖垫底超离心 | 第42-43页 |
| 1．1．5 层析和浓缩 | 第43页 |
| 1．1．6 电镜负染观察 | 第43页 |
| 1．2 抗体的制备 | 第43页 |
| 1．3 兔抗血清的纯化 | 第43页 |
| 1．4 免疫组织化学染色 | 第43页 |
| 1．4．1 取材与制片 | 第43页 |
| 1．4．2 HRP—SPA免疫组织化学染色步骤及观察 | 第43页 |
| 2． 结果 | 第43-46页 |
| 2．1 纯化病毒的检出 | 第44页 |
| 2．2 免疫组化染色 | 第44页 |
| 2．3 免疫组化条件的优化 | 第44-46页 |
| 2．3．1 抗血清最佳工作时间的确定 | 第44页 |
| 2．3．2 HRP—SPA最佳稀释度和工作时间的确定 | 第44-46页 |
| 3． 讨论 | 第46-49页 |
| 英文摘要 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
