| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 1 引言 | 第8-13页 |
| ·镉对植物影响概述 | 第8-10页 |
| ·镉影响水分的吸收并引起的植物根部损伤 | 第9页 |
| ·镉对植物光合作用的影响 | 第9页 |
| ·镉对植物呼吸作用的影响 | 第9-10页 |
| ·植物对重金属毒性的耐受作用 | 第10-11页 |
| ·植物对镉的螯合作用以及金属硫蛋白的作用 | 第10-11页 |
| ·植物通过区域化响应重金属的毒害作用 | 第11页 |
| ·大麦在农业中的重要地位 | 第11-12页 |
| ·研究目的 | 第12-13页 |
| 2 材料与方法 | 第13-21页 |
| ·实验材料 | 第13页 |
| ·植物材料 | 第13页 |
| ·植物生长液成分 | 第13页 |
| ·实验方法 | 第13-21页 |
| ·大麦的种植以及植物材料的选择 | 第13-14页 |
| ·植物 RNA 的提取 | 第14-15页 |
| ·RNA 电泳 | 第15页 |
| ·激光获取大麦麦粒4 种组织的分离实验 | 第15页 |
| ·大麦籽粒的冷冻切片 | 第15页 |
| ·大麦籽粒冷冻切片的激光切割 | 第15页 |
| ·痕量RNA 的提取(使用ARCTURUS 的PicoPure RNA Isolation kit) | 第15-16页 |
| ·大麦籽粒4 种组织细胞的cDNA 制备（使用 SuperscriptⅡ，Invitrogen 公司） | 第16页 |
| ·RealTime PCR 实验 | 第16-20页 |
| ·RealTime PCR 实验体系 | 第16-17页 |
| ·RealTime PCR 实验中检测的目的基因以及所使用的引物 | 第17-20页 |
| ·引物效率的测定 | 第20页 |
| ·根部、叶片和籽粒cDNA 质量检测 | 第20页 |
| ·RealTime PCR 实验分析大麦根部、叶片和籽粒相关基因表达水平 | 第20-21页 |
| 3 结果 | 第21-31页 |
| ·大麦植株受到重金属镉诱导后的表象以及根部受到的抑制 | 第21-22页 |
| ·RNA 电泳检测所有植物材料提取RNA 质量 | 第22-23页 |
| ·RealTime PCR 实验进行cDNA 质量分析 | 第23页 |
| ·RealTime PCR 结果分析 | 第23-29页 |
| ·受镉影响叶片、根部和籽粒中基因表达差异 | 第23-26页 |
| ·受镉影响麦粒中转运区、糊粉层、胚乳和胚中基因表达差异 | 第26-29页 |
| ·MT 家族基因表达差异 | 第26-27页 |
| ·ZIP、CDF 家族基因表达差异 | 第27-29页 |
| ·CAX 基因表达差异 | 第29页 |
| ·通过激光获取分离实验分离出大麦籽粒4 种组织 | 第29-31页 |
| 4 讨论 | 第31-32页 |
| 5 结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 附录 | 第36-37页 |
| 致谢 | 第37页 |
