| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| ·引言 | 第11-13页 |
| ·益生菌的概述 | 第11-12页 |
| ·在衰老过程中主要的生理性变化 | 第12-13页 |
| ·氧化应激加剧 | 第12-13页 |
| ·免疫功能的下降 | 第13页 |
| ·益生菌潜在的抗衰老作用 | 第13-17页 |
| ·益生菌的免疫调节功能 | 第13-14页 |
| ·益生菌的抗氧化能力 | 第14-16页 |
| ·益生菌的抗衰老作用 | 第16-17页 |
| ·衰老评价模型 | 第17-20页 |
| ·几种主要的体内实验模型 | 第17-18页 |
| ·Klotho 基因缺陷衰老模型 | 第17-18页 |
| ·D-半乳糖致衰老模型 | 第18页 |
| ·SAMP 系小鼠快速衰老模型 | 第18页 |
| ·推荐的两种体外抗衰老评价模型 | 第18-20页 |
| ·单胺氧化酶抑制模型 | 第18-19页 |
| ·Caco-2 细胞模型 | 第19-20页 |
| ·本研究的重要意义和主要内容 | 第20-22页 |
| ·本研究的重要意义 | 第20-21页 |
| ·主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 单胺氧化酶的制备及活性测定 | 第22-27页 |
| ·前言 | 第22页 |
| ·材料与方法 | 第22-24页 |
| ·Wistar 雄性老年大鼠 | 第22-23页 |
| ·试剂与药品 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·实验仪器与设备 | 第23页 |
| ·单胺氧化酶的制备 | 第23-24页 |
| ·单胺氧化酶的活性测定 | 第24页 |
| ·单胺氧化酶蛋白质含量测定 | 第24页 |
| ·结果 | 第24-26页 |
| ·抽提物中 MAO 活性测定 | 第24-25页 |
| ·单胺氧化酶蛋白质含量测定 | 第25-26页 |
| ·讨论 | 第26页 |
| ·本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 具有抑制单胺氧化酶作用的益生乳酸菌筛选 | 第27-39页 |
| ·前言 | 第27-28页 |
| ·材料与方法 | 第28-31页 |
| ·实验菌种 | 第28页 |
| ·试剂与药品 | 第28-29页 |
| ·试剂 | 第28-29页 |
| ·实验仪器与设备 | 第29页 |
| ·乳酸菌的分离 | 第29-30页 |
| ·样品的采集 | 第29-30页 |
| ·MRS 平板分离 | 第30页 |
| ·菌株平板纯化 | 第30页 |
| ·菌株增菌扩培 | 第30页 |
| ·接触酶试验 | 第30页 |
| ·待筛样品的制备 | 第30-31页 |
| ·单胺氧化酶抑制剂活性的测定 | 第31页 |
| ·单胺氧化酶抑制剂量效关系的测定 | 第31页 |
| ·不同条件对单胺氧化酶抑制率的影响 | 第31页 |
| ·不同预保温时间 | 第31页 |
| ·不同分子量范围的菌株细胞裂解物 | 第31页 |
| ·结果 | 第31-37页 |
| ·人体粪便中乳酸菌的分离 | 第31-33页 |
| ·抑制单胺氧化酶的益生乳酸菌筛选 | 第33-35页 |
| ·菌株JH-23 的细胞裂解物对单胺氧化酶活性抑制的量效关系 | 第35-36页 |
| ·抑制剂和单胺氧化酶的不同预保温时间对该酶抑制率的影响 | 第36页 |
| ·不同分子量范围的细胞裂解物对单胺氧化酶的抑制影响 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| ·本章小结 | 第38-39页 |
| 第四章 菌株 JH-23 中抑制单胺氧化酶的活性物质分离研究 | 第39-51页 |
| ·引言 | 第39-40页 |
| ·材料与方法 | 第40-42页 |
| ·实验菌种 | 第40页 |
| ·试剂与药品 | 第40-41页 |
| ·试剂 | 第40页 |
| ·实验仪器与设备 | 第40-41页 |
| ·丙酮抽提法制备菌株JH-23 的无细胞提取物 | 第41页 |
| ·丙酮提取物的全波长扫描及量效关系测定 | 第41页 |
| ·丙酮提取物的分离 | 第41页 |
| ·分离组分的MAO 抑制活性及量效关系的测定 | 第41页 |
| ·国家新药筛选中心单胺氧化酶活性测定 | 第41-42页 |
| ·结果 | 第42-48页 |
| ·丙酮提取物的全波长扫描 | 第42页 |
| ·丙酮提取物的量效关系测定 | 第42-43页 |
| ·丙酮提取物的分离研究 | 第43-45页 |
| ·分析型薄层色谱 | 第43-44页 |
| ·制备型薄层色谱 | 第44-45页 |
| ·经TLC 分离得到的各组分MAO 抑制活性测定 | 第45-46页 |
| ·分离组分的量效关系测定 | 第46-47页 |
| ·国家新药筛选中心鉴定报告 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| ·本章小结 | 第49-51页 |
| 第五章 具有抑制单胺氧化酶作用的益生乳酸菌生长特性研究和菌种鉴定 | 第51-74页 |
| ·前言 | 第51-52页 |
| ·材料与方法 | 第52-55页 |
| ·实验菌株 | 第52页 |
| ·试剂与药品 | 第52-53页 |
| ·试剂 | 第52页 |
| ·试验仪器与设备 | 第52-53页 |
| ·菌株JH-23 的生长特性研究 | 第53-55页 |
| ·菌株耐酸能力测定 | 第53页 |
| ·菌株胆盐耐受能力的测定 | 第53页 |
| ·菌株对 NaCl 耐受性的测定 | 第53-54页 |
| ·菌株最适生长温度和最适生长pH 值的测定 | 第54页 |
| ·菌株生长最适接种量的测定 | 第54页 |
| ·菌株产酸能力检验和生长曲线的绘制 | 第54页 |
| ·菌株保藏特性研究方法 | 第54页 |
| ·菌株的药敏性试验 | 第54-55页 |
| ·乳酸菌的鉴定 | 第55页 |
| ·实验菌株的培养特征 | 第55页 |
| ·实验菌株的生化特性 | 第55页 |
| ·实验菌株的16s rDNA 序列分析 | 第55页 |
| ·结果 | 第55-70页 |
| ·菌株生长特性研究 | 第55-66页 |
| ·菌株 JH-23 耐酸性实验 | 第55-56页 |
| ·菌株耐胆盐实验 | 第56-57页 |
| ·菌株 JH-23 的 NaCl 耐受性 | 第57-58页 |
| ·菌株 JH-23 的最适生长温度 | 第58-59页 |
| ·菌株 JH-23 的最适生长pH 值 | 第59-60页 |
| ·菌株 JH-23 的生长最适接种量 | 第60-61页 |
| ·菌株 JH-23 生长曲线的测定 | 第61-63页 |
| ·菌株 JH-23 在4 ℃的保藏特性 | 第63-64页 |
| ·菌株 JH-23 的药敏性实验 | 第64-66页 |
| ·抑制单胺氧化酶的益生菌JH-23 的菌种鉴定结果 | 第66-70页 |
| ·JH-23 的菌落形态观察 | 第66页 |
| ·JH-23 的菌体形态 | 第66-67页 |
| ·JH-23 的液体培养特征 | 第67页 |
| ·JH-23 的生化特性 | 第67-70页 |
| ·JH-23 的 16s rDNA 全序列分析 | 第70页 |
| ·讨论 | 第70-73页 |
| ·本章小结 | 第73-74页 |
| 全文主要结论 | 第74-75页 |
| 问题与展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文清单 | 第82页 |
