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人肝脏特异性表达的小RNA-miR-122表达调控机制与功能的研究

中文摘要第1-10页
英文摘要第10-13页
前言第13-31页
 一、MICRORNA是基因表达调控网络中参与基因转录后水平调节的新成员第13-25页
  (一) miRNAs基因的发现与克隆第13-14页
  (二) miRNAs的生物合成第14-19页
   1.miRNA基因的转录与转录初产物的剪接第15-17页
   2.miRNA前体的转运出核第17-18页
   3.pre-miRNA的剪切与miRNA的成熟第18-19页
  (三) miRNAs基因的时空表达与调控第19-20页
  (四) microRNA对靶基因的识别以及作用机制第20-21页
  (五) miRNA的功能第21-25页
   1.miRNA在几种动植物模式生物中的功能第21-24页
     ·miRNA在拟南芥(Arabidopsis thaliaha)中的功能第21-22页
     ·miRNA在秀丽隐杆线虫(C.elegans)中的功能第22-23页
     ·miRNA在果蝇(Drosophila melanogaster)中的功能第23页
     ·miRNA在斑马鱼(zebrafish)中的功能第23-24页
     ·miRNA在小鼠(mouse)中的功能第24页
   2.miRNA与人类(human)疾病第24-25页
 二、HNF4与MIR-122肝脏特异性表达的潜在联系第25-29页
  (一) HNF4是肝脏中高表达的调节脂类代谢相关基因的重要转录因子第25-28页
  (二) miR-122是一个肝脏特异性高表达并参与脂类代谢的microRNA第28-29页
 三、本文主要研究内容第29-31页
材料与方法第31-63页
 一、材料第31-37页
  1.菌株和质粒第31页
  2.细胞系第31页
  3.限制性内切酶及其它修饰酶类第31-32页
  4.各种转染试剂第32页
  5.抗体第32页
  6.其它主要试剂及试剂盒第32页
  7.主要仪器第32-33页
  8.放射性核素第33页
  9.生物信息学软件和数据库第33页
  10.实验中所用寡聚核苷酸列表第33-37页
   ·引物第34-36页
   ·探针第36页
   ·本研究中所用的合成siRNA的DNA序列第36-37页
 二、实验方法第37-63页
  1.质粒的构建第39-42页
   1) 酶切反应第39页
   2) DNA片段回收第39页
   3) DNA片段3’凹端的补平第39页
   4) DNA片段3’凸端的削平第39-40页
   5) 载体的脱磷酸化第40页
   6) 连接反应第40-41页
   7) 感受态大肠杆菌细胞制备第41页
   8) 转化第41页
   9) 质粒DNA的小量制备第41-42页
   10) 质粒DNA的大量制备第42页
  2.细胞培养第42-43页
   1) G418溶液配制第42-43页
   2) 细胞生长条件第43页
   3) 细胞传代第43页
   4) 复苏及冻存第43页
  3.脂质体转染质粒DNA第43-44页
  4.病毒包装与转导第44-45页
   1) 病毒包装、病毒上清收集及冻存第44-45页
   2) 病毒转导靶细胞的程序第45页
  5.miRNA前体结构分析第45-51页
   1) Northern blot分析第45-47页
    a) 从转染细胞中提取总RNA第45页
    b) 电泳第45-46页
    c) Northern转膜第46页
    d) 预杂交第46页
    e) DNA探针标记第46页
    f) 杂交第46-47页
    g) 洗膜及放射自显影第47页
   2) miRNA前体的RT-PCR分析第47页
    a) 从转染细胞中提取总RNA第47页
    b) 反转录成cDNA第一链(参照产品说明)第47页
    c) 利用前体特异性引物进行PCR检测第47页
    d) 数据分析第47页
   3) 5’RNA末端快速扩增(5'RACE)第47-51页
    a) 设计并合成5’磷酸化修饰的特异性引物第48页
    b) Huh7细胞总RNA的提取第48页
    c) 反转录成cDNA第一链(参照产品说明)第48-49页
    d) 利用RNaseH降解RNA第49页
    e) cDNA第一链的自环化连接第49页
    f) 第一次PCR反应第49-50页
    g) 第二次PCR反应第50-51页
    h) 电泳、回收第51页
    i) 克隆、测序和比对第51页
  6.miRNA表达分析第51-53页
   1) miRNA前体的定量PCR分析第51页
    a) 从转染细胞中提取总RNA第51页
    b) 反转录成cDNA第一链(参照产品说明)第51页
    c) 定量PCR分析第51页
    d) 数据分析第51页
   2) miRNA表达的Northern blot分析第51-53页
    a) 从转染细胞中提取总RNA第51-52页
    b) 变性聚丙烯酰胺凝胶的制备第52页
    c) 样品处理、上样、电泳第52页
    d) 电转移第52页
    e) 探针标记第52-53页
    f) 杂交第53页
    g) 放射性自显影和X光片冲洗第53页
  7.半定量RT-PCR检测基因的mRNA表达水平第53-54页
   1) 从细胞中提取细胞总RNA第53页
   2) 反转录成cDNA第一链(参照产品说明)第53页
   3) 半定量RT-PCR第53-54页
  8.双荧光素酶报告系统测定启动子活性第54-55页
  9.染色质免疫共沉淀(CHIP)第55-57页
   A部分 DNA剪切(1x106细胞)第55页
   B部分 免疫共沉淀第55-56页
   C部分 洗脱结合于转录因子的DNA第56页
   D部分 苯/氯仿法提取DNA第56-57页
   E部分 PCR第57页
  10.电泳迁移率变动实验(EMSA)第57-60页
   ·溶液配制第57-58页
   ·核蛋白提取第58页
   ·放射性标记探针第58-59页
   ·PAGE电泳转膜第59页
   ·显影第59-60页
  11.Western Blot第60-63页
   ·细胞及组织总蛋白提取第60页
   ·蛋白质浓度测定第60页
   ·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第60-61页
   ·抗原抗体反应第61页
   ·辣根过氧化物酶化学发光法检测蛋白(ECL反应)第61-62页
   ·溶液配制第62-63页
实验结果第63-84页
 一、MIR-22在进化上具有高度保守性第63-64页
 二、MIR-122前体位于一个肝脏特异性高表达的连续的转录单元内第64-67页
 三、MIR-122成熟序列是由一个较大的具有内含子的前体转录本中剪切得到的第67-70页
 四、MIR-122前体是由其5’上游的一个进化上保守的启动子区域指导转录的第70-75页
 五、HNF4对MIR-122启动子区具有明显的上调作用第75-78页
 六、通过上调和下调HNF4的表达,证明HNF4对MIR-122表达具有明显的正调节作用第78-79页
 七、MIR-122负调节定位于线粒体的多种基因第79-81页
 八、不同刺激条件下,MIR-122表达呈现动态变化与平衡第81-84页
讨论第84-94页
 一、MICRORNA各种检测方法的优缺点第84-87页
  1.Norther blot第84页
  2.结合生物信息学的验证方法第84页
  3.miRNA前体检测法第84-85页
  4.液相杂交法第85页
  5.Taqman探针定量PCR法第85-86页
  6.寡聚核苷酸的微排列芯片第86-87页
  7.Solexa测序法第87页
 二、MIR-122前体的转录可能受到多种转录因子的调节第87-89页
 三、MIR-122在代谢过程的变化以及对代谢平衡的作用第89-91页
 四、MIR-122与线粒体合成和能量代谢具有内在联系第91-92页
 五、本课题研究的不足与完善的方案第92-94页
参考文献第94-101页
小结第101-102页
非论文综述第102-110页
致谢第110-111页
个人简历第111-113页

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