| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 1 绪论 | 第11-24页 |
| ·课题背景(或引言) | 第11-12页 |
| ·生物降解萘的研究现状 | 第12-17页 |
| ·萘降解菌和降解质粒的研究进展 | 第12-13页 |
| ·降解基因的研究进展 | 第13-14页 |
| ·萘降解途径的研究 | 第14-15页 |
| ·细胞固定化技术在生物降解萘上的应用 | 第15-16页 |
| ·表面活性剂在生物降解萘上的应用 | 第16页 |
| ·有机溶剂在萘降解上的应用 | 第16-17页 |
| ·两相体系的应用现状 | 第17页 |
| ·生物合成靛蓝的研究现状 | 第17-21页 |
| ·微生物和加氧酶的研究现状 | 第17-20页 |
| ·反应体系的研究现状 | 第20-21页 |
| ·固定化酶和辅酶再生技术的应用 | 第21页 |
| ·生物合成靛蓝的动力学研究 | 第21页 |
| ·存在的问题及其发展前景 | 第21-24页 |
| ·萘降解菌株研究的单一性 | 第21-22页 |
| ·表面活性剂在生物降解萘中应用的局限性 | 第22页 |
| ·生物技术应用发展的缓慢 | 第22页 |
| ·食用天然色素质量差、纯度和产量低 | 第22页 |
| ·两相体系中有机溶剂的种类和添加量的限制性问题 | 第22页 |
| ·酶的研究和菌种选择上的局限性 | 第22-24页 |
| 2 萘降解菌LHJ38培养方法的建立 | 第24-32页 |
| ·前言 | 第24页 |
| ·实验材料和实验方法 | 第24-25页 |
| ·菌种及培养基 | 第24页 |
| ·试剂和仪器 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25页 |
| ·生长曲线的测定 | 第25页 |
| ·培养条件实验 | 第25页 |
| ·油相细胞和水相细胞生长速率的测定 | 第25页 |
| ·细胞在油水两相中分布情况的观察及测定 | 第25页 |
| ·分析方法 | 第25页 |
| ·结果与讨论 | 第25-30页 |
| ·生长曲线 | 第25-26页 |
| ·两相体系中油相细胞和水相细胞的生长情况 | 第26-28页 |
| ·萘添加量对LHJ38生长的影响 | 第28页 |
| ·石蜡油添加量对LHJ38生长的影响 | 第28-29页 |
| ·两相体系中LHJ38的分布情况 | 第29-30页 |
| ·本章小结 | 第30-32页 |
| 3 两相体系LHJ38生物降解萘的研究 | 第32-37页 |
| ·前言 | 第32页 |
| ·实验材料和实验方法 | 第32-33页 |
| ·菌种及培养基 | 第32页 |
| ·试剂和仪器 | 第32-33页 |
| ·实验方法 | 第33页 |
| ·菌悬液的制备 | 第33页 |
| ·萘降解曲线的测定 | 第33页 |
| ·萘降解速率的测定 | 第33页 |
| ·萘在水和石蜡油中溶解度的测定 | 第33页 |
| ·萘在水和石蜡油中的分配系数测定 | 第33页 |
| ·分析方法 | 第33-34页 |
| ·结果与讨论 | 第34-36页 |
| ·萘降解曲线 | 第34页 |
| ·油相细胞和水相细胞萘降解速率的对比实验 | 第34-35页 |
| ·石蜡油添加量对萘降解的影响 | 第35-36页 |
| ·本章小结 | 第36-37页 |
| 4 萘降解菌LHJ38生物催化氧化吲哚合成靛蓝的研究 | 第37-44页 |
| ·前言 | 第37页 |
| ·材料与仪器 | 第37-38页 |
| ·菌种 | 第37页 |
| ·培养基 | 第37-38页 |
| ·试剂和仪器 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·靛蓝的生物合成实验 | 第38页 |
| ·水杨酸钠对生物合成靛蓝的影响 | 第38-39页 |
| ·结果和讨论 | 第39-43页 |
| ·靛蓝的生物合成实验 | 第39-40页 |
| ·水杨酸钠对生物合成靛蓝的影响 | 第40-43页 |
| ·本章小结 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |