摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
第1章 引言 | 第10-25页 |
1.1 植物应答逆境胁迫的可能机制 | 第11-14页 |
1.1.1 植物激素及类激素物质对逆境的响应 | 第11-12页 |
1.1.2 渗透调节物质对逆境的响应 | 第12-13页 |
1.1.3 蛋白质对逆境的响应 | 第13页 |
1.1.4 基因对逆境的响应 | 第13-14页 |
1.2 藻类抗氧化酶系统研究进展 | 第14-24页 |
1.2.1 抗氧化系统简介 | 第14-15页 |
1.2.2 影响藻类抗氧化酶系统活性的各种逆境胁迫 | 第15-19页 |
1.2.3 抗氧化酶系统活性与藻类抗逆性的关系 | 第19-20页 |
1.2.4 抗氧化酶基因的分子生物学研究 | 第20-24页 |
1.3 本研究的目的意义 | 第24-25页 |
第2章 材料与方法 | 第25-38页 |
2.1 实验材料及处理 | 第25页 |
2.2 实验仪器 | 第25-26页 |
2.3 实验所需试剂 | 第26-27页 |
2.4 实验引物 | 第27-29页 |
2.5 实验方法 | 第29-38页 |
2.5.1 酶活及活性氧含量的测定 | 第29-30页 |
2.5.2 总RNA的提取 | 第30页 |
2.5.3 总RNA的质量检测 | 第30页 |
2.5.4 基因克隆 | 第30-36页 |
2.5.5 实时荧光定量PCR | 第36-37页 |
2.5.6 数据分析 | 第37-38页 |
第3章 实验结果 | 第38-90页 |
3.1 实验样品RNA制备及质量检测 | 第38-40页 |
3.2 高温胁迫下过氧化物含量及抗氧化酶系统活性的变化 | 第40-43页 |
3.2.1 高温胁迫下活性氧含量的变化 | 第40-41页 |
3.2.2 高温胁迫下抗氧化酶活性的变化 | 第41-43页 |
3.3 抗氧化酶系统相关基因的全长克隆与序列分析 | 第43-80页 |
3.3.1 坛紫菜抗氧化酶系统相关基因的全长克隆 | 第43-45页 |
3.3.2 序列分析 | 第45-80页 |
3.4 抗氧化酶系统基因转录本在坛紫菜不同世代中的表达分析 | 第80-82页 |
3.5 抗氧化酶系统相关基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第82-90页 |
3.5.1 PhMSD基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第82-83页 |
3.5.2 PhCSD1基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第83页 |
3.5.3 PhCSD2基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第83-84页 |
3.5.4 PhGPX基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第84-85页 |
3.5.5 PhCAT基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第85页 |
3.5.6 PhGR基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第85-86页 |
3.5.7 PhAPX基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第86-87页 |
3.5.8 PhMDAR基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第87页 |
3.5.9 PhPrxR基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第87-88页 |
3.5.10 PhTR基因在高温、失水胁迫下的表达分析 | 第88-90页 |
第4章 讨论 | 第90-100页 |
4.1 坛紫菜活性氧清除通路的细胞学定位 | 第90-94页 |
4.2 抗氧化酶基因表达量与坛紫菜逆境胁迫抗性的关系 | 第94页 |
4.3 细胞中过氧化物含量及抗氧化酶系统活性与坛紫菜高温胁迫应答的关系 | 第94-95页 |
4.4 抗氧化酶基因表达量与坛紫菜高温胁迫耐受性的关系 | 第95-96页 |
4.5 Z61细胞中ROS清除通路对高温胁迫的响应机制 | 第96-98页 |
4.6 Z61细胞中ROS清除通路对失水胁迫的响应机制 | 第98-100页 |
结论与展望 | 第100-102页 |
致谢 | 第102-103页 |
参考文献 | 第103-117页 |
在学期间发表的学术论文 | 第117页 |