| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第10-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-33页 |
| 1.1 乙型脑炎的发现 | 第12-13页 |
| 1.2 乙型脑炎的流行病学 | 第13-15页 |
| 1.2.1 乙型脑炎的流行与分布 | 第13-14页 |
| 1.2.2 乙型脑炎的传播 | 第14-15页 |
| 1.3 乙型脑炎的病原学特征 | 第15-18页 |
| 1.3.1 乙型脑炎病毒的理化性质 | 第15-16页 |
| 1.3.2 乙型脑炎病毒基因组结构特征 | 第16-17页 |
| 1.3.3 乙型脑炎病毒的复制 | 第17-18页 |
| 1.4 乙型脑炎病毒的致病过程 | 第18-20页 |
| 1.5 乙型脑炎病毒感染引起的免疫应答 | 第20-21页 |
| 1.6 乙型脑炎的诊断、防治及疫苗的研究进展 | 第21-23页 |
| 1.6.1 乙型脑炎的诊断 | 第21页 |
| 1.6.2 乙型脑炎的防治 | 第21-22页 |
| 1.6.3 乙型脑炎疫苗的研究进展 | 第22-23页 |
| 1.7 机体抗病毒免疫记忆的形成 | 第23-28页 |
| 1.7.1 细胞免疫记忆的形成 | 第24-25页 |
| 1.7.2 体液免疫记忆的形成 | 第25-27页 |
| 1.7.3 调控免疫记忆形成的因素 | 第27-28页 |
| 1.8 髓系来源的抑制性细胞(MDSCs) | 第28-33页 |
| 1.8.1 MDSCs的来源及亚群 | 第28-30页 |
| 1.8.2 不同病理条件下的MDSCs | 第30页 |
| 1.8.3 MDSCs调节适应性免疫应答的机制 | 第30-32页 |
| 1.8.4 MDSCs对免疫记忆潜在的影响 | 第32-33页 |
| 2 目的与意义 | 第33-34页 |
| 3 材料与方法 | 第34-47页 |
| 3.1 实验材料 | 第34-37页 |
| 3.1.1 病毒、细胞 | 第34页 |
| 3.1.2 主要药品和试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.3 培养基及其配制 | 第35页 |
| 3.1.4 溶液及其配制 | 第35-36页 |
| 3.1.5 实验动物 | 第36页 |
| 3.1.6 实验所用手术器械 | 第36页 |
| 3.1.7 重要仪器及设备 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-47页 |
| 3.2.1 细胞的复苏和培养 | 第37页 |
| 3.2.2 JEV的扩增与毒价滴定 | 第37-39页 |
| 3.2.3 JEV-P3和SA14-14-2感染C57BL/6小鼠 | 第39页 |
| 3.2.4 小鼠血液单细胞悬液的制备 | 第39-40页 |
| 3.2.5 小鼠淋巴结单细胞悬液的制备 | 第40页 |
| 3.2.6 小鼠脾脏单细胞悬液的制备 | 第40-41页 |
| 3.2.7 小鼠骨髓单细胞悬液的制备 | 第41页 |
| 3.2.8 细胞表面染色和胞内染色 | 第41-42页 |
| 3.2.9 IgG亚型及IgA的检测 | 第42-43页 |
| 3.2.10 MDSCs的分选 | 第43-44页 |
| 3.2.11 MDSCs的回输 | 第44-45页 |
| 3.2.12 体内剔除MDSCs | 第45页 |
| 3.2.13 流式细胞术数据分析 | 第45页 |
| 3.2.14 数据统计分析 | 第45页 |
| 3.2.15 手术器械消毒 | 第45-46页 |
| 3.2.16 实验动物及废物无害化处理 | 第46-47页 |
| 4 结果与分析 | 第47-76页 |
| 4.1 JEV-P3株和JEV-SA14-14-2株毒价的测定 | 第47页 |
| 4.2 JEV感染对T细胞免疫记忆形成的影响 | 第47-53页 |
| 4.2.1 JEV感染对CD4~+T细胞上CD127分子表达的影响 | 第47-49页 |
| 4.2.2 JEV感染对CD8~+MPECs、SLECs细胞的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.3 JEV感染对TCM、TEM细胞的影响 | 第50-53页 |
| 4.3 JEV感染对B细胞免疫记忆形成的影响 | 第53-57页 |
| 4.3.1 JEV感染对GC B、Tfh细胞的影响 | 第53-55页 |
| 4.3.2 JEV感染对Bmem、LL-PCs细胞的影响 | 第55-57页 |
| 4.4 P3感染诱导产生的MDSCs对T细胞免疫记忆形成的影响 | 第57-62页 |
| 4.4.1 MDSCs的剔除对CD127、CCR7、MPECs、SLECs的影响 | 第57-59页 |
| 4.4.2 MDSCs的回输对CD127、CCR7、MPECs、SLECs的影响 | 第59-62页 |
| 4.5 P3感染诱导产生的MDSCs对二次感染后T细胞免疫应答的影响 | 第62-66页 |
| 4.6 P3感染诱导产生的MDSCs对B细胞免疫记忆形成的影响 | 第66-71页 |
| 4.6.1 MDSCs的剔除对GCB、Tfh细胞的影响 | 第66-68页 |
| 4.6.2 MDSCs的剔除对Bmem、LL-PCs细胞的影响 | 第68-70页 |
| 4.6.3 MDSCs的剔除对小鼠血清中抗体产生的影响 | 第70-71页 |
| 4.7 P3感染诱导产生的MDSCs对二次感染后B细胞免疫应答的影响 | 第71-76页 |
| 5 讨论 | 第76-81页 |
| 5.1 SA14-14-2能刺激机体产生较好的T细胞免疫记忆 | 第77页 |
| 5.2 P3刺激机体产生较好的B细胞免疫记忆 | 第77-78页 |
| 5.3 MDSCs抑制了T细胞免疫记忆的产生 | 第78-79页 |
| 5.4 MDSCs抑制了B细胞免疫记忆的产生 | 第79页 |
| 5.5 MDSCs影响了二次感染JEV后T、B细胞的免疫应答 | 第79-81页 |
| 6 结论 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
