| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| ABBREVIATION | 第8-13页 |
| 第一部分 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1“寒”与肿瘤 | 第13-14页 |
| 1.1.1“寒”在中医中的含义 | 第13页 |
| 1.1.2 因寒致瘤的源流 | 第13-14页 |
| 1.1.3 现代医学关于因寒致瘤的论述 | 第14页 |
| 1.2 中医对“肺癌”认识的发展 | 第14-16页 |
| 1.2.1 肺癌的流行病学研究 | 第14-15页 |
| 1.2.2 中医“肺癌”的由来 | 第15页 |
| 1.2.3 中医对肺癌病因病机的论述 | 第15-16页 |
| 1.2.4 中医对肺癌的治疗原则 | 第16页 |
| 1.3 临床从寒论治肿瘤被忽视的原因 | 第16-17页 |
| 1.3.1 从发病原因说 | 第16页 |
| 1.3.2 从发病机制说 | 第16-17页 |
| 1.3.3 从临床表现说 | 第17页 |
| 1.3.4 从药理研究说 | 第17页 |
| 1.4 立题依据 | 第17-19页 |
| 1.4.1 因寒致瘤病机的理论基础 | 第17-18页 |
| 1.4.2 从寒论治的治疗原则 | 第18页 |
| 1.4.3 现代医学研究支撑 | 第18-19页 |
| 1.5 选题意义 | 第19-21页 |
| 第二部分 低温对MNU诱导BEAS-2B恶性转化的影响 | 第21-31页 |
| 2.1 前言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.2.1 试剂材料 | 第22页 |
| 2.2.2 试剂配制 | 第22-23页 |
| 2.2.3 实验细胞 | 第23页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.3.1 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞增殖的影响 | 第24页 |
| 2.3.2 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞凋亡的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.3 低温对MNU诱导的BEAS-2B细胞软琼脂克隆形成影响 | 第25页 |
| 2.3.4 碱性彗星实验 | 第25-26页 |
| 2.3.5 统计学分析 | 第26页 |
| 2.4 实验结果 | 第26-30页 |
| 2.4.1 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞增殖的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.2 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞凋亡的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.3 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞克隆形成影响 | 第28-29页 |
| 2.4.4 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞DNA损伤的影响 | 第29-30页 |
| 2.5 实验小结 | 第30-31页 |
| 第三部分 温热药与寒凉药对肺癌的治疗作用比较 | 第31-41页 |
| 3.1 前言 | 第31-32页 |
| 3.2 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.2.1 实验药品 | 第32页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第32页 |
| 3.2.3 实验动物 | 第32页 |
| 3.2.4 实验瘤株 | 第32-33页 |
| 3.2.5 实验仪器 | 第33页 |
| 3.3 实验方法 | 第33-36页 |
| 3.3.1 对LLC小鼠皮下移植模型的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.2 对LLC肺癌小鼠实验性肺癌转移模型的影响 | 第34页 |
| 3.3.3 Cx43免疫组化检测 | 第34-36页 |
| 3.3.4 统计学分析 | 第36页 |
| 3.4 实验结果 | 第36-40页 |
| 3.4.1 对LLC皮下移植模型小鼠中医体征的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.2 对小鼠LLC皮下移植模型肿瘤的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.3 乌头和黄连水煎液对lewis肺癌肺转移小鼠中医体征的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.4 乌头和黄连水煎液对lewis肺癌肺转移的影响 | 第39-40页 |
| 3.5 实验小结 | 第40-41页 |
| 第四部分 温热药与寒凉药对LEWIS肺癌细胞分化的作用比较 | 第41-49页 |
| 4.1 前言 | 第41-42页 |
| 4.2 实验材料 | 第42页 |
| 4.2.1 试剂材料 | 第42页 |
| 4.2.2 实验动物 | 第42页 |
| 4.2.3 实验细胞 | 第42页 |
| 4.2.4 实验仪器 | 第42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-44页 |
| 4.3.1 含药血清制备方法 | 第42页 |
| 4.3.2 细胞增殖检测 | 第42-43页 |
| 4.3.3 细胞黏附检测 | 第43页 |
| 4.3.4 细胞琥珀酸脱氢酶（SDH)活性检测 | 第43页 |
| 4.3.5 细胞间隙连接通讯功能检测 | 第43-44页 |
| 4.3.6 细胞分化检测 | 第44页 |
| 4.3.7 统计方法 | 第44页 |
| 4.4 实验结果 | 第44-47页 |
| 4.4.1 含药血清对lewis肺癌细胞功能和生物学特性的影响 | 第44-45页 |
| 4.4.2 含药血清对lewis肺癌细胞连接通讯的影响 | 第45页 |
| 4.4.3 对lewis肺癌细胞分化的影响 | 第45-47页 |
| 4.5 实验小结 | 第47-49页 |
| 第五部分 低温促进MNU诱导BEAS-2B恶性转化的机制研究 | 第49-59页 |
| 5.1 前言 | 第49-50页 |
| 5.2 实验材料 | 第50-51页 |
| 5.2.1 试剂材料 | 第50页 |
| 5.2.2 实验细胞 | 第50页 |
| 5.2.3 实验仪器 | 第50-51页 |
| 5.3 实验方法 | 第51-52页 |
| 5.3.1 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞TGF-β1、TNF-α分泌的影响 | 第51页 |
| 5.3.2 中和TGF-β1、TNF-α对低温促进BEAS-2B转化细胞增殖的影响 | 第51页 |
| 5.3.3 中和TGF-β1、TNF-α对低温促进BEAS-2B转化细胞克隆的影响 | 第51页 |
| 5.3.4 低温对MNU转化正常BEAS-2B细胞EMT影响 | 第51-52页 |
| 5.3.5 低温对CD8+细胞对A549细胞的毒性作用影响 | 第52页 |
| 5.3.6 统计学分析 | 第52页 |
| 5.4 实验结果 | 第52-57页 |
| 5.4.1 低温对MNU诱导的BEAS-2B转化细胞TGF-Β1、TNF-Α分泌的影响 | 第52-53页 |
| 5.4.2 中和TGF-β1、TNF-α对低温促进MNU诱导转化细胞增殖的影响 | 第53-54页 |
| 5.4.3 中和 3TGF-β1、TNF-α对低温促进MNU诱导转化细胞克隆的影响 | 第54-55页 |
| 5.4.4 低温对BEAS-2B转化细胞EMT的影响 | 第55-56页 |
| 5.4.5 低温对CD8+细胞对A549细胞的毒性作用影响 | 第56-57页 |
| 5.5 实验小结 | 第57-59页 |
| 第六部分 讨论 | 第59-63页 |
| 第七部分 实验结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 创新性总结 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第77-78页 |
