| 前言 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第15-37页 |
| 1.1 糖尿病与认知功能障碍 | 第15-20页 |
| 1.1.1 血糖的稳定对神经功能的重要性 | 第16页 |
| 1.1.2 胰岛素对大脑的重要性 | 第16-17页 |
| 1.1.3 糖尿病血管病变 | 第17页 |
| 1.1.4 氧化应激，神经细胞凋亡和糖尿病性神经炎症 | 第17-18页 |
| 1.1.5 糖尿病对AChE活性的干扰 | 第18页 |
| 1.1.6 糖尿病与线粒体功能障碍 | 第18页 |
| 1.1.7 神经营养因子功能的受损 | 第18-19页 |
| 1.1.8 胰岛素受体功能下降，胰岛素抵抗和高胰岛素血症 | 第19页 |
| 1.1.9 神经传递递质谷氨酸受体亚单位结构的损害 | 第19页 |
| 1.1.10 糖尿病患者高脂血症引起的脑损伤 | 第19页 |
| 1.1.11 DM阻碍脑组织的修复过程 | 第19-20页 |
| 1.2 研究糖尿病的动物模型 | 第20-22页 |
| 1.2.1 STZ模型 | 第20页 |
| 1.2.2 BB大鼠模型 | 第20页 |
| 1.2.3 Lepob / ob小鼠 | 第20-21页 |
| 1.2.4 Leprdb / db小鼠 | 第21页 |
| 1.2.5 Zucker肥胖大鼠 | 第21页 |
| 1.2.6 ZDF大鼠 | 第21页 |
| 1.2.7 相关模型在实验中的应用 | 第21-22页 |
| 1.3 LncRNA简介 | 第22-24页 |
| 1.4 lncRNA的分型 | 第24页 |
| 1.5 lncRNA的作用机制 | 第24-26页 |
| 1.6 LncRNA在人类疾病中的表达 | 第26-27页 |
| 1.7 LncRNA在糖尿病各个环节中的作用 | 第27-30页 |
| 1.7.1 LncRNA对胰岛功能中的作用 | 第27-28页 |
| 1.7.2 LncRNA在糖代谢及脂肪分解中的作用 | 第28-29页 |
| 1.7.3 LncRNA在糖尿病并发症中的作用 | 第29-30页 |
| 1.7.4 LncRNA在糖尿病诊治中的应用前景 | 第30页 |
| 1.8 脑组织中LncRNA | 第30-32页 |
| 1.9 LncRNA H19 | 第32-33页 |
| 1.10 Wnt信号通路与海马 | 第33-35页 |
| 1.11 本研究的立项依据 | 第35-37页 |
| 第2章 材料和方法 | 第37-57页 |
| 2.1 主要试剂材料 | 第37-38页 |
| 2.2 主要仪器 | 第38-39页 |
| 2.3 动物模型的制作 | 第39-40页 |
| 2.4 动物分组 | 第40页 |
| 2.5 立体注射 | 第40-41页 |
| 2.6 莫里斯水迷宫测试评估大鼠的学习和记忆能力 | 第41-43页 |
| 2.7 苏木精 - 伊红（HE）染色和细胞计数 | 第43-46页 |
| 2.8 电子显微镜观察 | 第46-48页 |
| 2.9 蛋白质印迹 | 第48-51页 |
| 2.10 定量实时聚合酶链反应（qRT-PCR） | 第51-52页 |
| 2.11 TUNEL染色 | 第52-53页 |
| 2.12 全基因组甲基化检测H19启动子区 | 第53-55页 |
| 2.13 数据分析 | 第55-57页 |
| 第3章 结果 | 第57-69页 |
| 3.1 lncRNA H19在海马组织中的表达 | 第57页 |
| 3.2 正常组和模型组大鼠模型中全基因甲基化 | 第57-58页 |
| 3.3 DM大鼠血糖水平和体重 | 第58-60页 |
| 3.4 DM大鼠的定位导航和空间探索能力 | 第60-61页 |
| 3.5 DM大鼠海马CA1区病理变化 | 第61-62页 |
| 3.6 DM大鼠海马CA1区电子显微镜观察 | 第62-64页 |
| 3.7 Wnt信号通路蛋白在各组DM大鼠海马中的表达 | 第64-65页 |
| 3.8 DM大鼠海马神经元细胞凋亡 | 第65-66页 |
| 3.9 在DM大鼠海马组织中凋亡相关蛋白的表达 | 第66-69页 |
| 第4章 讨论 | 第69-71页 |
| 第5章 结论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-95页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
