| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 褐藻胶概述 | 第9-10页 |
| 1.1.1 褐藻胶的结构 | 第9页 |
| 1.1.2 褐藻胶的应用 | 第9-10页 |
| 1.2 褐藻寡糖的研究现状 | 第10-16页 |
| 1.2.1 褐藻寡糖的制备 | 第10-12页 |
| 1.2.2 褐藻寡糖的分级分离 | 第12-14页 |
| 1.2.3 褐藻寡糖的纯度分析 | 第14-15页 |
| 1.2.4 褐藻寡糖的结构鉴定 | 第15-16页 |
| 1.3 褐藻寡糖的生理活性 | 第16-17页 |
| 1.3.1 降压作用 | 第16页 |
| 1.3.2 抗氧化作用 | 第16页 |
| 1.3.3 改善粘膜状态 | 第16页 |
| 1.3.4 促生长作用 | 第16-17页 |
| 1.4 低密度脂蛋白受体与前蛋白转化酶枯草溶菌素 | 第17-18页 |
| 1.4.1 低密度脂蛋白受体(LDLR) | 第17页 |
| 1.4.2 前蛋白转化酶枯草溶菌素9(PCSK9) | 第17-18页 |
| 1.5 本课题的研究意义 | 第18页 |
| 1.6 本课题的主要研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验菌种与细胞 | 第19页 |
| 2.1.2 实验试剂材料 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第20页 |
| 2.1.4 培养基 | 第20-21页 |
| 2.1.5 主要溶液 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 不饱和褐藻寡糖的制备 | 第22页 |
| 2.2.2 褐藻寡糖的分离纯化 | 第22页 |
| 2.2.3 寡糖的纯度及分子量确定 | 第22-23页 |
| 2.2.4 核磁共振分析 | 第23-24页 |
| 2.2.5 细胞实验 | 第24页 |
| 2.2.6 荧光定量PCR | 第24-26页 |
| 2.2.7 Westernblot分析相关蛋白表达水平 | 第26-27页 |
| 2.2.8 统计学处理 | 第27-28页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第28-47页 |
| 3.1 褐藻粗寡糖的制备和分离 | 第28-34页 |
| 3.1.1 褐藻粗寡糖的制备和初步鉴定 | 第28-29页 |
| 3.1.2 粗寡糖脂代谢活性的初步分析 | 第29-32页 |
| 3.1.3 粗寡糖的分离 | 第32-33页 |
| 3.1.4 脱盐 | 第33-34页 |
| 3.1.5 分析和讨论 | 第34页 |
| 3.2 四种组分的分子量和纯度分析 | 第34-40页 |
| 3.2.1 TLC分析 | 第34-35页 |
| 3.2.2 LC-MS分析 | 第35-37页 |
| 3.2.3 HPLC分析 | 第37-39页 |
| 3.2.4 分析与讨论 | 第39-40页 |
| 3.3 二、三、四糖的结构解析 | 第40-43页 |
| 3.3.1 二糖氢谱分析 | 第40-41页 |
| 3.3.2 三糖氢谱分析 | 第41页 |
| 3.3.3 四糖氢谱分析 | 第41-42页 |
| 3.3.4 分析与讨论 | 第42-43页 |
| 3.4 四种组分的脂代谢活性 | 第43-47页 |
| 3.4.1 不同浓度的四种组分对HepG2细胞活性的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.2 四种组分对HepG2细胞LDLR基因表达影响 | 第44-45页 |
| 3.4.3 四种组分对HepG2细胞PCSK9蛋白表达影响 | 第45页 |
| 3.4.4 Fr4对HepG2细胞SREBP-2基因表达的影响 | 第45页 |
| 3.4.5 分析与讨论 | 第45-47页 |
| 主要结论与展望 | 第47-49页 |
| 主要结论 | 第47页 |
| 展望 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第54页 |
