| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 蛭弧菌简介 | 第12-17页 |
| 1.1.1 蛭弧菌的分类学位置及类型 | 第12-13页 |
| 1.1.2 蛭弧菌的作用机理 | 第13-14页 |
| 1.1.3 蛭弧菌的应用安全性 | 第14-15页 |
| 1.1.4 蛭弧菌在水产养殖中的应用 | 第15-16页 |
| 1.1.5 蛭弧菌在食品行业的应用 | 第16页 |
| 1.1.6 蛭弧菌在畜牧养殖业业的应用 | 第16-17页 |
| 1.1.7 蛭弧菌保质期的研究问题 | 第17页 |
| 1.2 阿仑尼乌斯方程理论及其在贮藏期预测中的应用 | 第17-19页 |
| 1.2.1 阿仑尼乌斯方程理论 | 第17-18页 |
| 1.2.2 阿仑尼乌斯方程理论在贮藏期预测中的应用 | 第18-19页 |
| 1.3 我国的大菱鲆养殖状况及微生态制剂的应用 | 第19-21页 |
| 1.3.1 大菱鲆养殖状况 | 第19页 |
| 1.3.2 微生态制剂在大菱鲆养殖中的应用 | 第19-20页 |
| 1.3.3 大菱鲆肠道微生物的研究 | 第20-21页 |
| 1.4 PCR-DGGE 指纹图谱技术 | 第21-22页 |
| 1.4.1 DGGE 的基本原理及优点 | 第21页 |
| 1.4.2 PCR-DGGE 技术应用于养殖水体微生物菌群检测 | 第21-22页 |
| 1.4.3 PCR-DGGE 技术应用于肠道微生物菌群检测 | 第22页 |
| 1.5 本文的研究目的和研究内容 | 第22-24页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第22-23页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 蛭弧菌 BDS01 的保质期研究 | 第24-43页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 材料、试剂和设备 | 第25-27页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.3 培养基 | 第26页 |
| 2.2.4 溶液 | 第26-27页 |
| 2.2.5 仪器设备 | 第27页 |
| 2.3 试验方法 | 第27-30页 |
| 2.3.1 宿主菌的制备 | 第27页 |
| 2.3.2 蛭弧菌 BDS01 游泳体的制备及浓度的检测 | 第27-28页 |
| 2.3.3 加速实验 | 第28-30页 |
| 2.3.4 蛭弧菌存活率的检测 | 第30页 |
| 2.4 结果和讨论 | 第30-41页 |
| 2.4.1 蛭弧菌 BDS01 的检测 | 第30-31页 |
| 2.4.2 加速试验结果 | 第31-37页 |
| 2.4.3 复合保护剂正交实验 | 第37-41页 |
| 2.4.4 讨论 | 第41页 |
| 2.5 本章小结 | 第41-43页 |
| 第三章 保护剂对蛭弧菌 BDS01 的保护作用及其保质期评价方法的验证 | 第43-49页 |
| 3.1 引言 | 第43页 |
| 3.2 材料与设备 | 第43-44页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第43页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第43页 |
| 3.2.3 培养基 | 第43页 |
| 3.2.4 溶液 | 第43-44页 |
| 3.2.5 仪器设备 | 第44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-45页 |
| 3.3.1 宿主菌的制备 | 第44页 |
| 3.3.2 蛭弧菌 BDS01 游泳体的制备 | 第44页 |
| 3.3.3 蛭弧菌 BDS01 游泳体浓度的测定 | 第44页 |
| 3.3.4 验证性实验 | 第44-45页 |
| 3.3.5 数据处理 | 第45页 |
| 3.4 结果和讨论 | 第45-48页 |
| 3.4.1 蛭弧菌 BDS01 检测平板结果 | 第45页 |
| 3.4.2 25℃下的验证性试验结果 | 第45-46页 |
| 3.4.3 10℃下的验证性实验结果 | 第46-47页 |
| 3.4.4 4℃下的验证性实验结果 | 第47-48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 大菱鲆肠道菌群 DGGE 指纹图谱分析及多样性评价 | 第49-79页 |
| 4.1 引言 | 第49-50页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第50-53页 |
| 4.2.1 材料 | 第50页 |
| 4.2.2 样品采集 | 第50页 |
| 4.2.3 主要试剂 | 第50-51页 |
| 4.2.4 溶液 | 第51-52页 |
| 4.2.5 仪器设备 | 第52-53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-59页 |
| 4.3.1 DNA 提取方法 | 第53-54页 |
| 4.3.2 引物序列 | 第54页 |
| 4.3.3 PCR 反应体系及循环参数 | 第54-55页 |
| 4.3.4 变性梯度凝胶电泳 | 第55-57页 |
| 4.3.5 共有条带和显著性条带回收 | 第57页 |
| 4.3.6 回收条带扩增 | 第57-58页 |
| 4.3.7 回收纯化 DNA 的克隆 | 第58-59页 |
| 4.4 结果分析与讨论 | 第59-77页 |
| 4.4.1 大菱鲆肠道总 DNA 提取结果 | 第59页 |
| 4.4.2 肠道菌群 16SrDNA 基因 PCR 扩增 | 第59-60页 |
| 4.4.3 肠道样品 PCR 产物 DGGE 结果分析 | 第60-68页 |
| 4.4.4 对照组和实验组两个月前后对照肠道菌群结构变化 | 第68-77页 |
| 4.5 本章小结 | 第77-79页 |
| 结论与展望 | 第79-81页 |
| 结论 | 第79页 |
| 创新点 | 第79-80页 |
| 展望 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-90页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 答辩委员会对论文的评定意见 | 第92页 |
