| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-25页 |
| 1.1 研究目的意义和内容 | 第12-14页 |
| 1.1.1 研究目的和意义 | 第12页 |
| 1.1.2 研究内容 | 第12-14页 |
| 1.2 文献综述 | 第14-24页 |
| 1.2.1 白粉病 | 第14-15页 |
| 1.2.2 植物诱导抗病 | 第15-23页 |
| 1.2.3 植物诱导抗病性的研究意义与展望 | 第23-24页 |
| 1.3 本试验技术路线 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-33页 |
| 2.1 材料、试剂和仪器 | 第25页 |
| 2.1.1 材料 | 第25页 |
| 2.1.2 病原菌材料 | 第25页 |
| 2.1.3 主要试验仪器 | 第25页 |
| 2.1.4 试验主要试剂 | 第25页 |
| 2.2 试验方法 | 第25-33页 |
| 2.2.1 番茄白粉病病原鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.2 诱导剂的筛选和诱导抗性处理 | 第27-28页 |
| 2.2.3 防御相关酶活性的测定 | 第28-30页 |
| 2.2.4 信使分子的测定 | 第30页 |
| 2.2.5 抗病相关蛋白基因的Real-time RT-qPCR分析 | 第30-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-49页 |
| 3.1 番茄白粉病病原鉴定 | 第33-35页 |
| 3.1.1 番茄白粉病症状 | 第33页 |
| 3.1.2 番茄白粉菌形态特征 | 第33-34页 |
| 3.1.3 番茄白粉菌核糖体DNA的ITS区扩增及序列分析 | 第34-35页 |
| 3.2 诱导剂的筛选及诱导抗性效果 | 第35-39页 |
| 3.2.1 诱导剂处理后番茄抗病性测定 | 第35-37页 |
| 3.2.2 最佳诱导间隔期与持效期 | 第37-38页 |
| 3.2.3 BABA和BTH对不同苗龄番茄幼苗的诱导效果 | 第38-39页 |
| 3.3 诱导剂诱导后对番茄防御相关酶活性的影响 | 第39-43页 |
| 3.3.1 过氧化物酶(POD)活性的变化 | 第39-41页 |
| 3.3.2 多酚氧化酶(PPO)活性的变化 | 第41-42页 |
| 3.3.3 过氧化氢酶(CAT)活性的变化 | 第42-43页 |
| 3.4 信号分子的变化 | 第43-46页 |
| 3.4.1 H_2O_2含量的变化 | 第43-45页 |
| 3.4.2 NO含量的变化 | 第45-46页 |
| 3.5 番茄抗性相关基因的Real-time RT-qPCR表达分析 | 第46-49页 |
| 3.5.1 番茄总RNA的提取 | 第46页 |
| 3.5.2 溶解曲线分析 | 第46页 |
| 3.5.3 抗病相关蛋白基因在抗、感材料中的表达 | 第46-49页 |
| 4 讨论 | 第49-54页 |
| 4.1 番茄白粉病原的分离与鉴定 | 第49页 |
| 4.2 诱导剂处理后番茄白粉病抗性效果 | 第49-50页 |
| 4.3 诱导剂对番茄防御相关酶活性的影响 | 第50-52页 |
| 4.4 信号分子的变化 | 第52页 |
| 4.5 抗病相关蛋白基因的表达 | 第52-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第65页 |
