| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第9-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 研究现状、成果 | 第13-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、miR-106b～25在胶质瘤中表达的研究 | 第18-37页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-23页 |
| 1.1.1 对象 | 第19页 |
| 1.1.2 方法 | 第19-22页 |
| 1.1.3 统计学处理 | 第22-23页 |
| 1.2 结果 | 第23-35页 |
| 1.2.1 组织芯片中miR-106b～25的表达 | 第23-27页 |
| 1.2.2 新鲜组织中miR-106b～25的表达 | 第27-32页 |
| 1.2.3 胶质瘤细胞系中miR-106b～25的表达 | 第32-33页 |
| 1.2.4 胶质瘤细胞系中miR-106b、-93、-25表达的相关性分析 | 第33-35页 |
| 1.3 讨论 | 第35-36页 |
| 1.4 小结 | 第36-37页 |
| 二、反义miR-106b～25抑制胶质瘤细胞生物学行为的研究 | 第37-68页 |
| 2.1 对象和方法 | 第37-44页 |
| 2.1.1 对象 | 第37-38页 |
| 2.1.2 方法 | 第38-44页 |
| 2.1.3 统计学处理 | 第44页 |
| 2.2 结果 | 第44-62页 |
| 2.2.1 Real-time PCR检测转染后肿瘤细胞中miRNA的农达 | 第44-46页 |
| 2.2.2 流式细胞术分析转染后细胞周期分布的改变 | 第46-49页 |
| 2.2.3 MTT检测转染后细胞增殖能力的变化 | 第49-52页 |
| 2.2.4 Transwell实验检测转染后细胞侵袭能力的变化 | 第52-54页 |
| 2.2.5 Anexin Ⅴ检测细胞凋亡的变化 | 第54-56页 |
| 2.2.6 软琼脂克隆形成实验 | 第56-59页 |
| 2.2.7 Western blot检测相关蛋白的表达 | 第59-62页 |
| 2.3 讨论 | 第62-66页 |
| 2.4 小结 | 第66-68页 |
| 三、反义miR-106b～25抑瘤机制的探讨 | 第68-108页 |
| 3.1 对象和方法 | 第69-72页 |
| 3.1.1 对象 | 第69页 |
| 3.1.2 方法 | 第69-72页 |
| 3.1.3 统计学处理 | 第72页 |
| 3.2 结果 | 第72-103页 |
| 3.2.1 生物信息学方法分析miR-106b～25基因簇成员的靶基因及功能 | 第72-88页 |
| 3.2.2 miR-106b～25对RB1家族成员的靶向调控作用 | 第88-91页 |
| 3.2.3 反义miR-106b、-93抑瘤机制的探讨 | 第91-103页 |
| 3.3 讨论 | 第103-107页 |
| 3.4 小结 | 第107-108页 |
| 四、反义miR-106b～25抑瘤作用的体内研究 | 第108-123页 |
| 4.1 对象和方法 | 第108-111页 |
| 4.1.1 对象 | 第108页 |
| 4.1.2 方法 | 第108-111页 |
| 4.2 结果 | 第111-118页 |
| 4.2.1 miR-106b～25体内抑制异种移植胶质瘤生长情况 | 第111-113页 |
| 4.2.2 治疗后相关指标的变化 | 第113-118页 |
| 4.3 讨论 | 第118-121页 |
| 4.4 小结 | 第121-123页 |
| 全文结论 | 第123-124页 |
| 论文创新点 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-135页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第135-136页 |
| 综述 miR-106b～25基因簇在肿瘤中的研究进展 | 第136-143页 |
| 综述参考文献 | 第140-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
