| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第1章 引言 | 第13-27页 |
| 1.1 微生物互营种间电子传递 | 第13-16页 |
| 1.1.1 间接种间电子传递MIET | 第14-15页 |
| 1.1.2 直接种间电子传递DIET | 第15-16页 |
| 1.2 三种不同DIET途径 | 第16-20页 |
| 1.2.1 导电菌毛e-pili电子传递机制 | 第16-17页 |
| 1.2.2 非生物性外源导电性材料 | 第17-19页 |
| 1.2.3 细胞外表面的生物导电联系 | 第19-20页 |
| 1.3 发现DIET的生态环境系统 | 第20-22页 |
| 1.3.1 厌氧消化反应器 | 第20-21页 |
| 1.3.2 产甲烷土壤 | 第21-22页 |
| 1.3.3 厌氧光合作用 | 第22页 |
| 1.4 发现DIET的策略 | 第22-24页 |
| 1.4.1 添加电极材料或导电矿物富集 | 第23页 |
| 1.4.2 通过导电性鞭毛来识别微生物 | 第23-24页 |
| 1.4.3 通过微生物的物理接触来识别 | 第24页 |
| 1.5 DIET的实际应用 | 第24-25页 |
| 1.6 DIET的研究展望 | 第25-27页 |
| 1.6.1 研究意义与目的 | 第26页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第26-27页 |
| 第2章 人工合成磁铁矿促进丙酸互营氧化产甲烷过程的微生物机制 | 第27-49页 |
| 2.1 前言 | 第27-28页 |
| 2.2 材料和方法 | 第28-33页 |
| 2.2.1 污泥取样 | 第28页 |
| 2.2.2 微生物培养基配方 | 第28-29页 |
| 2.2.3 甲烷的测定 | 第29页 |
| 2.2.4 乙酸/丙酸的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.5 HCl可提取态Fe(II)和总Fe的测定 | 第30页 |
| 2.2.6 污泥样品DNA提取 | 第30-32页 |
| 2.2.7 实验处理设计 | 第32-33页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第33-47页 |
| 2.3.1 甲烷产生和丙酸降解 | 第33-36页 |
| 2.3.2 宏基因组的结果分析 | 第36-47页 |
| 2.4 小结 | 第47-49页 |
| 第3章 生物磁铁矿促进丙酸互营氧化产甲烷过程的微生物机制 | 第49-80页 |
| 3.1 前言 | 第49-50页 |
| 3.2 材料与方法 | 第50-54页 |
| 3.2.1 稻田土样品的处理 | 第50-51页 |
| 3.2.2 实验用到的仪器和药品汇总 | 第51-52页 |
| 3.2.3 微生物培养基 | 第52页 |
| 3.2.4 实验室水铁矿的配置 | 第52-53页 |
| 3.2.5 甲烷的测定 | 第53页 |
| 3.2.6 乙酸/丙酸的测定 | 第53页 |
| 3.2.7 水稻土DNA样品的提取 | 第53-54页 |
| 3.2.8 氢气的测定 | 第54页 |
| 3.3 实验处理设计 | 第54-58页 |
| 3.3.1 生物磁铁矿形成实验 | 第54页 |
| 3.3.2 加氢实验 | 第54-55页 |
| 3.3.3 同位素实验 | 第55-56页 |
| 3.3.4 折光度调节与超高速离心分层 | 第56-57页 |
| 3.3.5 产甲烷菌的定量PCR | 第57-58页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第58-78页 |
| 3.4.1 生物磁铁矿的形成 | 第58-60页 |
| 3.4.2 不同成矿产物下的微生物产甲烷情况和丙酸降解情况 | 第60-62页 |
| 3.4.3 加氢实验验证不同电子传递机制 | 第62-64页 |
| 3.4.4 超高速离心分层和mcrA基因定量PCR的结果 | 第64-68页 |
| 3.4.5 微生物群落结构分析 | 第68-74页 |
| 3.4.6 DNA-SIP结果分析 | 第74-78页 |
| 3.5 小结 | 第78-80页 |
| 第4章 主要结论、创新之处及展望 | 第80-83页 |
| 4.1 主要结论 | 第80页 |
| 4.2 创新之处 | 第80-81页 |
| 4.3 不足之处及研究展望 | 第81-83页 |
| 4.3.1 不足之处 | 第81页 |
| 4.3.2 研究展望 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-96页 |
| 致谢 | 第96-98页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第98页 |
