| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 γ-PGA的特性概述 | 第13-14页 |
| 1.2.1 γ-PGA的结构 | 第13页 |
| 1.2.2 γ-PGA的性质及功能 | 第13-14页 |
| 1.3 γ-PGA的合成 | 第14-16页 |
| 1.3.1 γ-PGA的生产方法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 γ-PGA生物合成相关基因及合成机制 | 第15-16页 |
| 1.4 γ-PGA的提取方法 | 第16-17页 |
| 1.4.1 化学沉淀法 | 第16页 |
| 1.4.2 有机溶剂沉淀法 | 第16页 |
| 1.4.3 膜分离法 | 第16-17页 |
| 1.5 双水相萃取 | 第17-23页 |
| 1.5.1 双水相系统的形成及分配原理 | 第17-20页 |
| 1.5.2 双水相体系相图 | 第20页 |
| 1.5.3 双水相萃取的特点 | 第20-21页 |
| 1.5.4 双水相萃取技术的影响因素 | 第21-22页 |
| 1.5.5 双水相萃取技术的应用 | 第22-23页 |
| 1.6 γ-PGA初步鉴定 | 第23-24页 |
| 1.7 本课题的意义和研究内容 | 第24-25页 |
| 2 利用PEG-盐双水相体系提取发酵液中的γ-PGA | 第25-39页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.2 实验主要仪器设备 | 第26页 |
| 2.2.3 实验培养基 | 第26-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.3.1 γ-PGA发酵液的制备 | 第27页 |
| 2.3.2 十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)比浊法测γ-PGA含量 | 第27页 |
| 2.3.3 绘制相图 | 第27页 |
| 2.3.4 双水相体系制备 | 第27-28页 |
| 2.3.5 单因素实验 | 第28页 |
| 2.3.6 正交试验设计 | 第28-29页 |
| 2.3.7 双水相体系中γ-PGA分配行为描述 | 第29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-36页 |
| 2.4.1 检测波长的确定 | 第29-30页 |
| 2.4.2 绘制CTAB法标准曲线 | 第30页 |
| 2.4.3 PEG-盐双水相体系的相图 | 第30-32页 |
| 2.4.4 不同双水相体系对γ-PGA提取率的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.5 PEG2000浓度对γ-PGA分配系数及提取率的影响 | 第33页 |
| 2.4.6 磷酸钾盐浓度对γ-PGA分配系数及提取率的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.7 磷酸钾盐缓冲液的pH值对γ-PGA分配系数及提取率的影响 | 第34页 |
| 2.4.8 环境温度对分配系数及提取率的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.9 添加NaCl的影响 | 第35-36页 |
| 2.5 正交试验优化提取条件 | 第36-38页 |
| 2.5.1 因素水平表 | 第36页 |
| 2.5.2 正交试验结果分析 | 第36-38页 |
| 2.6 本章小结 | 第38-39页 |
| 3 利用有机溶剂-盐双水相体系提取发酵液中的γ-PGA | 第39-49页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 实验材料 | 第39-40页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.2 实验主要仪器设备 | 第40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-41页 |
| 3.3.1 γ-PGA发酵液的制备 | 第40页 |
| 3.3.2 CTAB法测定γ-PGA含量 | 第40页 |
| 3.3.3 绘制相图 | 第40页 |
| 3.3.4 双水相体系制备 | 第40页 |
| 3.3.5 单因素实验 | 第40-41页 |
| 3.3.6 正交试验设计 | 第41页 |
| 3.3.7 双水相体系中γ-PGA分配行为描述 | 第41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-46页 |
| 3.4.1 有机溶剂-盐双水相体系的相图 | 第41-43页 |
| 3.4.2 不同双水相体系对γ-PGA提取率的影响 | 第43页 |
| 3.4.3 正丙醇浓度对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.4 碳酸钠浓度对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.5 温度对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第45页 |
| 3.4.6 pH对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第45-46页 |
| 3.5 正交试验优化提取条件 | 第46-48页 |
| 3.6 本章小结 | 第48-49页 |
| 4 利用离子液体-无机盐双水相体系提取发酵液中的γ-PGA | 第49-64页 |
| 4.1 引言 | 第49-50页 |
| 4.2 实验材料 | 第50-51页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第50页 |
| 4.2.2 实验主要仪器设备 | 第50-51页 |
| 4.3 实验方法 | 第51-52页 |
| 4.3.1 γ-PGA发酵液的制备 | 第51页 |
| 4.3.2 CTAB比浊法测定γ-PGA含量 | 第51页 |
| 4.3.3 绘制相图 | 第51页 |
| 4.3.4 双水相体系制备 | 第51页 |
| 4.3.5 单因素实验设计 | 第51-52页 |
| 4.3.6 响应面试验设计 | 第52页 |
| 4.3.7 双水相体系中γ-PGA分配行为的描述 | 第52页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第52-62页 |
| 4.4.1 离子液体-盐双水相体系的相图 | 第52-53页 |
| 4.4.2 不同双水相体系对γ-PGA提取率的影响 | 第53-54页 |
| 4.4.3 [C_4mim]Cl浓度对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.4 K_2HPO_4加入量对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.5 pH对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第56页 |
| 4.4.6 温度对γ-PGA分配系数和提取率的影响 | 第56-57页 |
| 4.4.7 响应面试验结果分析 | 第57-61页 |
| 4.4.8 最优提取条件的确定 | 第61-62页 |
| 4.4.9 γ-PGA提取方法的比较 | 第62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-64页 |
| 5 γ-PGA的初步鉴定 | 第64-73页 |
| 5.1 引言 | 第64页 |
| 5.2 实验材料 | 第64-65页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第64-65页 |
| 5.2.2 实验主要仪器设备 | 第65页 |
| 5.3 实验方法 | 第65-69页 |
| 5.3.1 试剂配制 | 第65-66页 |
| 5.3.2 透析 | 第66页 |
| 5.3.3 茚三酮比色法测定纯度 | 第66-67页 |
| 5.3.4 纸层析测定γ-PGA单体组成 | 第67页 |
| 5.3.5 SDS-PAGE电泳测量γ-PGA分子量 | 第67-69页 |
| 5.3.6 γ-PGA保水性研究 | 第69页 |
| 5.3.7 γ-PGA吸水性研究 | 第69页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第69-72页 |
| 5.4.1 茚三酮比色法测定γ-PGA纯度结果分析 | 第69-70页 |
| 5.4.2 纸层析测定γ-PGA单体组成结果分析 | 第70-71页 |
| 5.4.3 SDS-PAGE电泳法测定γ-PGA分子量结果分析 | 第71页 |
| 5.4.4 γ-PGA保水性研究结果分析 | 第71页 |
| 5.4.5 γ-PGA吸水性研究结果分析 | 第71-72页 |
| 5.5 本章小结 | 第72-73页 |
| 6 结论与展望 | 第73-75页 |
| 6.1 结论 | 第73-74页 |
| 6.2 展望 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第85-87页 |
