摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-34页 |
1.1 毛细管电色谱及其检测技术 | 第11-15页 |
1.1.1 UV-可见光吸收检测器 | 第12-13页 |
1.1.2 激光诱导荧光检测 | 第13页 |
1.1.3 电化学检测 | 第13页 |
1.1.4 质谱检测法 | 第13-14页 |
1.1.5 核磁共振检测器 | 第14-15页 |
1.2 毛细管电色谱中的电渗流 | 第15-18页 |
1.2.1 毛细管电色谱中电渗流理论研究模型 | 第15-16页 |
1.2.2 毛细管电色谱中电渗流产生原理 | 第16页 |
1.2.3 毛细管电色谱中电渗的控制 | 第16-18页 |
1.3 毛细管电泳手性拆分 | 第18-23页 |
1.3.1 主客体络合 | 第19-21页 |
1.3.2 配体交换络合 | 第21页 |
1.3.3 手性胶束包容 | 第21-22页 |
1.3.4 蛋白质亲和 | 第22-23页 |
1.4 本论文研究内容及意义 | 第23-24页 |
参考文献 | 第24-34页 |
第二章 二甲基乙醇胺纳米乳胶修饰柱的制备及对血清中肌酐含量的测定研究 | 第34-49页 |
2.1 前言 | 第34-35页 |
2.2 实验部分 | 第35-40页 |
2.2.1 仪器与试剂 | 第35-36页 |
2.2.2 二甲基乙醇胺纳米乳胶修饰柱的制备 | 第36页 |
2.2.3 纳米乳胶修饰柱的表征 | 第36-39页 |
2.2.4 纳米乳胶修饰柱的应用 | 第39-40页 |
2.3 结果与讨论 | 第40-45页 |
2.3.1 缓冲溶液的种类和浓度的选择 | 第40页 |
2.3.2 缓冲溶液pH的选择 | 第40-41页 |
2.3.3 缓冲溶液有机添加剂的选择 | 第41页 |
2.3.4 缓冲溶液电压的选择 | 第41-42页 |
2.3.5 场放大进样条件的优化 | 第42-43页 |
2.3.6 最优条件下分析方法学 | 第43-45页 |
2.4 结论 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-49页 |
第三章 甲基二乙醇胺纳米乳胶修饰柱的制备及对植物中吲哚乙酸和吲哚丁酸含量的测定研究 | 第49-66页 |
3.1 前言 | 第49-50页 |
3.2 实验部分 | 第50-56页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第50-51页 |
3.2.2 甲基二乙醇胺纳米乳胶修饰柱的制备 | 第51页 |
3.2.3 纳米乳胶修饰柱的表征 | 第51-54页 |
3.2.4 纳米乳胶修饰柱的应用 | 第54-56页 |
3.3 结果与讨论 | 第56-62页 |
3.3.1 缓冲溶液的种类和浓度的选择 | 第56-57页 |
3.3.2 缓冲溶液pH值的选择 | 第57页 |
3.3.3 缓冲溶液有机添加剂的选择 | 第57-58页 |
3.3.4 缓冲溶液电压的选择 | 第58页 |
3.3.5 场放大进样条件的优化 | 第58-59页 |
3.3.6 最优条件下分析方法学 | 第59-62页 |
3.4 结论 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-66页 |
第四章 磺化寡糖类似物的合成及其在毛细管电泳手性拆分西酞普兰类药物中的应用 | 第66-80页 |
4.1 前言 | 第66-67页 |
4.2 实验部分 | 第67-75页 |
4.2.1 仪器与试剂 | 第67-68页 |
4.2.2 磺化寡糖类似物(SCF6)的合成 | 第68页 |
4.2.3 SCF6的表征 | 第68-69页 |
4.2.4 毛细管电泳中的手性拆分实验 | 第69页 |
4.2.5 结果与讨论 | 第69-75页 |
4.3 结论 | 第75-77页 |
参考文献 | 第77-80页 |
发表论文 | 第80-81页 |
致谢 | 第81页 |