| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 引言 | 第13-24页 |
| 1.1 海藻糖概述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 海藻糖理化特性 | 第13页 |
| 1.1.2 昆虫海藻糖作用 | 第13-14页 |
| 1.1.3 昆虫海藻糖合成途径 | 第14-15页 |
| 1.1.4 海藻糖：药物新靶标 | 第15页 |
| 1.2 昆虫海藻糖合成酶 | 第15-18页 |
| 1.2.1 海藻糖合成酶基因结构 | 第15-16页 |
| 1.2.2 海藻糖合成酶结构及性质 | 第16-17页 |
| 1.2.3 海藻糖合成酶生物学功能 | 第17页 |
| 1.2.4 海藻糖合成酶基因研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3 昆虫海藻糖水解酶 | 第18-21页 |
| 1.3.1 海藻糖水解酶发现和生化性质 | 第18-19页 |
| 1.3.2 海藻糖水解酶保守序列 | 第19页 |
| 1.3.3 海藻糖水解酶生物学功能 | 第19-21页 |
| 1.3.4 海藻糖水解酶基因研究进展 | 第21页 |
| 1.4 昆虫血淋巴总糖作用 | 第21-22页 |
| 1.5 本研究目的和意义 | 第22-24页 |
| 第2章 材料与方法 | 第24-46页 |
| 2.1 供试虫源 | 第24页 |
| 2.2 组织分离 | 第24-25页 |
| 2.3 RNA提取 | 第25页 |
| 2.4 第一链cDNA合成 | 第25-29页 |
| 2.5 基因全长克隆 | 第29-42页 |
| 2.5.1 RT-PCR扩增基因中间序列 | 第29-30页 |
| 2.5.2 RACE-PCR扩增基因末端序列 | 第30-40页 |
| 2.5.2.1 5′-RACE | 第30-37页 |
| 2.5.2.2 3′-RACE | 第37-40页 |
| 2.5.3 克隆测序 | 第40-42页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR | 第42-43页 |
| 2.7 硫酸蒽酮法测血淋巴糖类含量 | 第43-44页 |
| 2.7.1 钨酸法制备无蛋白血淋巴 | 第43-44页 |
| 2.7.2 海藻糖含量测定 | 第44页 |
| 2.7.3 总糖含量测定 | 第44页 |
| 2.8 数据统计与生物信息学分析 | 第44-45页 |
| 2.9 系统进化分析 | 第45-46页 |
| 第3章 结果与分析 | 第46-58页 |
| 3.1 海藻糖合成酶基因cDNA全长克隆及分析 | 第46-47页 |
| 3.2 海藻糖水解酶基因cDNA全长克隆及分析 | 第47-52页 |
| 3.3 海藻糖水解酶系统进化分析 | 第52-53页 |
| 3.4 不同驯化方式对优雅蝈螽TPS表达、血淋巴海藻糖和总糖含量影响 | 第53-56页 |
| 3.4.1 模拟野外温度骤变驯化 | 第53-54页 |
| 3.4.2 缓慢升降温驯化 | 第54-55页 |
| 3.4.3 两种温度驯化方式比较 | 第55-56页 |
| 3.5 海藻糖水解酶基因组织特异性表达 | 第56-58页 |
| 第4章 讨论 | 第58-64页 |
| 4.1 海藻糖合成酶基因 | 第58-61页 |
| 4.2 海藻糖水解酶基因 | 第61-64页 |
| 第5章 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 附录 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果 | 第78页 |
| 发表论文 | 第78页 |
| 参与会议 | 第78页 |