目录 | 第5-8页 |
英文缩略词汇表 | 第8-10页 |
摘要 | 第10-13页 |
ABSTRACT | 第13-15页 |
引言 | 第16-19页 |
第一部分 RY10-4 的在肿瘤细胞中的抗血管生成作用 | 第19-42页 |
1. 实验材料及仪器 | 第19-20页 |
1.1 试药的准备 | 第19页 |
1.2 实验材料 | 第19-20页 |
1.3 主要设备与仪器 | 第20页 |
2. 细胞的准备及增殖抑制实验 | 第20-23页 |
2.1 细胞培养及缺氧诱导 | 第20-21页 |
2.2 MTT 细胞增殖实验 | 第21页 |
2.3 实验结果 | 第21-22页 |
2.4 结果讨论 | 第22-23页 |
3. 细胞迁移和小管形成实验 | 第23-26页 |
3.1 实验步骤 | 第23-24页 |
3.2 实验结果 | 第24-26页 |
4. RY10-4 对斑马鱼血管生成的影响 | 第26-29页 |
4.1 斑马鱼的来源 | 第26-27页 |
4.2 实验原理及步骤 | 第27页 |
4.3 实验结果 | 第27-28页 |
4.4 结果讨论 | 第28-29页 |
5. 免疫印迹法分析 RY10-4 对血管生成相关的信号通路蛋白的作用 | 第29-41页 |
5.1 溶液配制及方法 | 第29-33页 |
5.2 实验方法 | 第33-37页 |
5.3 实验结果 | 第37-38页 |
5.4 讨论 | 第38-41页 |
6. 统计学分析 | 第41-42页 |
第二部分 RY10-4 对于肿瘤细胞的侵袭抑制作用 | 第42-57页 |
1. 实验材料及仪器 | 第42-43页 |
1.1 试药的准备 | 第42页 |
1.2 实验试剂 | 第42-43页 |
1.3 主要仪器与设备 | 第43页 |
2. 细胞培养以及核质分离 | 第43-44页 |
2.1 细胞培养 | 第43页 |
2.2 细胞核质分离 | 第43-44页 |
3. 细胞粘附实验 | 第44-46页 |
3.1 实验方法 | 第44页 |
3.2 实验结果 | 第44-45页 |
3.3 实验讨论 | 第45-46页 |
4. 体外迁移与侵袭实验 | 第46-49页 |
4.1 实验方法 | 第46页 |
4.2 实验结果 | 第46-47页 |
4.3 实验讨论 | 第47-49页 |
5. E-Cadherin 和β-catenin 的免疫荧光分析 | 第49-52页 |
5.1 实验方法 | 第49页 |
5.2 实验结果 | 第49-50页 |
5.3 结果讨论 | 第50-52页 |
6. RY10-4 对 Wnt 及 MAPK 信号通路相关蛋白的免疫印迹分析 | 第52-56页 |
6.1 实验方法 | 第52页 |
6.2 实验结果 | 第52-54页 |
6.3 结果讨论 | 第54-56页 |
7. 统计性分析 | 第56-57页 |
第三部分 RY10-4 的检测方法学和初步药代研究 | 第57-78页 |
1. 仪器与试剂 | 第57页 |
1.1 实验试剂 | 第57页 |
1.2 实验仪器 | 第57页 |
2. UV 检测波长的确定 | 第57-58页 |
3. HPLC-UV 检测条件的确定及方法学 | 第58-62页 |
3.1 HPLC-UV 的检测条件确定 | 第58页 |
3.2 专属性实验 | 第58-59页 |
3.3 线性关系试验 | 第59-60页 |
3.4 精密度试验 | 第60页 |
3.5 稳定性试验 | 第60-61页 |
3.6 最低检测限和最低检测量 | 第61页 |
3.7 结果与讨论 | 第61-62页 |
4. RY10-4 的在大鼠体内药物代谢学初步研究 | 第62-65页 |
4.1 药品与试剂 | 第62页 |
4.2 动物 | 第62页 |
4.3 生物样品处理 | 第62-63页 |
4.4 方法学考察 | 第63-65页 |
4.5 RY10-4 在大鼠体内的组织分布 | 第65页 |
5. 实验结果 | 第65-77页 |
5.1 专属性实验 | 第65-69页 |
5.2 线性范围 | 第69页 |
5.3 回收率实验 | 第69-70页 |
5.4 精密度实验 | 第70-71页 |
5.5 最低检测限 | 第71页 |
5.6 稳定性实验 | 第71-72页 |
5.7 体内分布实验 | 第72-77页 |
6. 统计性分析 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-87页 |
综述 | 第87-111页 |
参考文献 | 第103-111页 |
攻读博士学位期间的研究成果 | 第111-112页 |
致谢 | 第112页 |