| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-20页 |
| ·引言 | 第12页 |
| ·雄蜱生殖腺形态结构及其分泌物生化特性 | 第12-14页 |
| ·MAG 分泌物的功能因子 | 第14-18页 |
| ·与精子发育有关的功能因子 | 第14-15页 |
| ·促进雌蜱吸血的功能因子 | 第15-16页 |
| ·促进雌蜱卵巢发育和卵黄发生的功能因子 | 第16-17页 |
| ·MAG 的其他功能因子 | 第17-18页 |
| ·昆虫雄性生殖腺功能因子 | 第18-19页 |
| ·存在的问题及展望 | 第19-20页 |
| 第二章 长角血蜱雄蜱性腺分泌物交配效应研究 | 第20-31页 |
| ·引言 | 第20页 |
| ·材料与方法 | 第20-22页 |
| ·长角血蜱的采集与喂养 | 第20-21页 |
| ·MAG 粗提液的收集 | 第21页 |
| ·粗提液的生物活性测定 | 第21页 |
| ·不同剂量粗提液生物活性测定 | 第21页 |
| ·双抗体夹心ELISA 法测定样品中Vn 或Vg 含量 | 第21-22页 |
| ·数据分析 | 第22页 |
| ·实验结果 | 第22-30页 |
| ·粗提液的生物活性测定 | 第22-23页 |
| ·不同剂量粗提液生物活性测定 | 第23-30页 |
| ·结果分析与讨论 | 第30-31页 |
| 第三章 构建两种硬蜱生殖腺全长cDNA 文库 | 第31-39页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·材料与方法 | 第31-33页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·总RNA 提取 | 第32页 |
| ·mRNA 纯化 | 第32页 |
| ·cDNA 文库构建 | 第32页 |
| ·连接转化 | 第32页 |
| ·库容量测定 | 第32-33页 |
| ·重组率测定 | 第33页 |
| ·实验结果与分析 | 第33-38页 |
| ·总RNA 提取 | 第33-35页 |
| ·cDNA 文库构建 | 第35-36页 |
| ·库容量及重组率的测定 | 第36-38页 |
| ·结果分析与讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 两种硬蜱饱血因子的基因克隆 | 第39-53页 |
| ·引言 | 第39-40页 |
| ·材料与方法 | 第40-42页 |
| ·两种硬蜱饱血因子完整编码序列(coding sequence, CDS)克隆 | 第40-41页 |
| ·HlEFα在各发育阶段及雌蜱各组织表达研究（RT-PCR） | 第41页 |
| ·HlEFα在饱血雄蜱各组织研究（Real-time PCR） | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-52页 |
| ·HlEFα和DsEFα基因克隆 | 第42-48页 |
| ·EFα组织表达性分析 | 第48-52页 |
| ·结果分析与讨论 | 第52-53页 |
| 第五章 两种硬蜱饱血雄蜱性腺cDNA 文库随机筛库 | 第53-55页 |
| ·引言 | 第53页 |
| ·材料与方法 | 第53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-55页 |
| 第六章 长角血蜱饱血性腺总蛋白鉴定 | 第55-60页 |
| ·引言 | 第55页 |
| ·材料与方法 | 第55-56页 |
| ·实验材料 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-56页 |
| ·实验结果与分析 | 第56-60页 |
| 第七章 结论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 附录 | 第70-73页 |
| 附录1 引物序列 | 第70-71页 |
| 附录2 大肠杆菌DH5α感受态细胞制备（氯化钙法） | 第71-72页 |
| 附录3 溶剂配方 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 个人简介 | 第75页 |
| 获奖情况 | 第75页 |
| 硕士期间已（待）发表的论文 | 第75页 |
