摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
前言 | 第15-16页 |
文献综述 | 第16-32页 |
第一章 拷贝数变异研究进展 | 第16-29页 |
1.1 拷贝数变异(CNV)的诞生 | 第16页 |
1.2 拷贝数变异(CNV)常见的形式 | 第16-17页 |
1.3 拷贝数变异(CNV)的形成机制 | 第17-20页 |
1.3.1 非等位同源重组 | 第18-19页 |
1.3.2 非同源末端连接 | 第19页 |
1.3.3 复制叉停滞与模板交换 | 第19-20页 |
1.3.4 L1 介导的反转录转座 | 第20页 |
1.4 拷贝数变异(CNV)的检测方法 | 第20-21页 |
1.4.1 已知 CNV 的检测方法 | 第20-21页 |
1.4.2 未知 CNV 的检测方法 | 第21页 |
1.5 拷贝数变异(CNV)的作用机理 | 第21-24页 |
1.5.1 CNV 与表型 | 第21-22页 |
1.5.2 CNV 与进化 | 第22-24页 |
1.6 拷贝数变异(CNV)的发生频率 | 第24页 |
1.7 拷贝数变异(CNV)在畜禽中的研究 | 第24-28页 |
1.7.1 CNV 在猪上的研究 | 第24-25页 |
1.7.2 CNV 在马上的研究 | 第25页 |
1.7.3 CNV 在牛上的研究 | 第25-27页 |
1.7.4 CNV 在羊上的研究 | 第27页 |
1.7.5 CNV 在鸡上的研究 | 第27-28页 |
1.8 展望 | 第28-29页 |
第二章 CYP4A11 基因研究进展 | 第29-32页 |
2.1 CYP4A11 基因与脂肪酸代谢 | 第29-30页 |
2.2 CYP4A11 基因与人类高血压 | 第30页 |
2.3 牛 CYP4A11 基因拷贝数变异的发现 | 第30-32页 |
实验研究 | 第32-74页 |
第三章 牛 CYP4A11 基因不同时期不同组织的表达差异 | 第32-38页 |
3.1 材料与方法 | 第32-34页 |
3.1.1 试验材料 | 第32页 |
3.1.2 试验方法 | 第32-34页 |
3.1.3 统计分析 | 第34页 |
3.2 结果与分析 | 第34-36页 |
3.2.1 RNA 的提取 | 第34页 |
3.2.2 实时定量 PCR | 第34-35页 |
3.2.3 秦川牛不同时期不同组织中 CYP4A11 基因的表达 | 第35-36页 |
3.3 讨论 | 第36-37页 |
3.3.1 牛 CYP4A11 基因的表达不具组织特异性 | 第36页 |
3.3.2 牛 CYP4A11 基因可能与生长及肉质有关 | 第36-37页 |
3.4 小结 | 第37-38页 |
第四章 牛不同拷贝数类型 CYP4A11 基因的表达差异研究 | 第38-46页 |
4.1 材料与方法 | 第38-40页 |
4.1.1 试验材料 | 第38页 |
4.1.2 试验方法 | 第38-40页 |
4.1.3 统计分析 | 第40页 |
4.2 结果与分析 | 第40-44页 |
4.2.1 RNA 的提取 | 第40页 |
4.2.2 实时定量 PCR | 第40-41页 |
4.2.3 CYP4A11 基因拷贝数变异的分布 | 第41-42页 |
4.2.4 CYP4A11 基因不同拷贝数类型之间 mRNA 表达量的差异 | 第42-44页 |
4.3 讨论 | 第44-45页 |
4.4 小结 | 第45-46页 |
第五章 牛 CYP4A11 基因的拷贝数变异在群体中的分布及其对生长性状的影响 | 第46-57页 |
5.1 材料与方法 | 第46-49页 |
5.1.1 试验材料 | 第46-47页 |
5.1.2 试验方法 | 第47-49页 |
5.1.3 资料的统计与分析 | 第49页 |
5.2 结果与分析 | 第49-55页 |
5.2.1 牛基因组 DNA 样品的检测 | 第49页 |
5.2.2 PCR 产物测序结果 | 第49-50页 |
5.2.3 实时定量 PCR | 第50页 |
5.2.4 不同牛品种间 CYP4A11 基因拷贝数类型的分布 | 第50-51页 |
5.2.5 牛 CYP4A11 基因不同拷贝数类型对生长性状的效应分析 | 第51-55页 |
5.3 讨论 | 第55-56页 |
5.3.1 CYP4A11 基因的拷贝数类型在不同群体中的分布既有相似性又存在差异 | 第55页 |
5.3.2 CYP4A11 基因的不同拷贝数对生长性状有影响 | 第55-56页 |
5.4 小结 | 第56-57页 |
第六章 牛 CYP4A11 基因的亚细胞定位分析 | 第57-64页 |
6.1 材料与方法 | 第57-60页 |
6.1.1 试验试剂 | 第57页 |
6.1.2 RNA 的提取及 cDNA 第一链的合成 | 第57页 |
6.1.3 牛 CYP4A11 基因的克隆 | 第57-59页 |
6.1.4 pEGFP-C1-CYP4A11 真核表达载体的构建 | 第59-60页 |
6.1.5 牛 CYP4A11 基因的亚细胞定位分析 | 第60页 |
6.2 结果与分析 | 第60-62页 |
6.2.1 牛 CYP4A11 基因的克隆 | 第60-61页 |
6.2.2 pEGFP-C1-CYP4A11 真核表达载体的构建 | 第61页 |
6.2.3 亚细胞定位分析 | 第61-62页 |
6.3 讨论 | 第62-63页 |
6.4 小结 | 第63-64页 |
第七章 过表达牛 CYP4A11 基因对脂肪生成的影响 | 第64-74页 |
7.1 材料与方法 | 第64-68页 |
7.1.1 试验试剂 | 第64页 |
7.1.2 RNA 的提取及 cDNA 第一链的合成 | 第64页 |
7.1.3 牛 CYP4A11 基因的克隆 | 第64-66页 |
7.1.4 pcDNA 3.1(+)-CYP4A11 真核表达载体的构建 | 第66页 |
7.1.5 pcDNA 3.1(+)-CYP4A11 转染 3T3-L1 细胞 | 第66页 |
7.1.6 3T3-L1 细胞的诱导分化 | 第66页 |
7.1.7 3T3-L1 细胞中候选基因的表达变化 | 第66-68页 |
7.1.8 3T3-L1 细胞的油红 O 染色 | 第68页 |
7.2 结果与分析 | 第68-72页 |
7.2.1 pcDNA 3.1(+)-CYP4A11 真核表达载体的构建 | 第68-69页 |
7.2.2 细胞的诱导分化 | 第69-70页 |
7.2.3 实时定量 PCR | 第70页 |
7.2.4 牛 CYP4A11 基因过表达效率的检测 | 第70-71页 |
7.2.5 候选基因的表达变化 | 第71页 |
7.2.6 油红 O 染色 | 第71-72页 |
7.3 讨论 | 第72-73页 |
7.4 小结 | 第73-74页 |
结论与创新点 | 第74-75页 |
结论 | 第74页 |
创新点 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-87页 |
附录 | 第87-109页 |
致谢 | 第109-110页 |
作者简介 | 第110页 |