大豆蛋白纳米粒子的制备、表征及药物传递性能研究
| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 纳米药物传递系统 | 第12-13页 |
| 1.2 肿瘤组织的特异性 | 第13-14页 |
| 1.3 pH敏感的纳米载体给药机制 | 第14-19页 |
| 1.3.1 基于质子化/去质子化 | 第14-16页 |
| 1.3.2 基于酸不稳定化学键 | 第16-19页 |
| 1.4 靶向纳米药物载体 | 第19-21页 |
| 1.5 大豆分离蛋白在药物载体领域的应用 | 第21-23页 |
| 1.6 选题思路及研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 大豆分离蛋白的改性与优化 | 第24-34页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 实验试剂和仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.3.1 大豆分离蛋白的酶解 | 第25-27页 |
| 2.3.1.1 加热预处理时间对蛋白水解的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.1.2 底物浓度对蛋白水解的影响 | 第26页 |
| 2.3.1.3 酶浓度对蛋白水解的影响 | 第26页 |
| 2.3.1.4 酶解时间对蛋白水解的影响 | 第26页 |
| 2.3.1.5 正交实验确立最优条件 | 第26-27页 |
| 2.3.2 大豆蛋白的纯化 | 第27页 |
| 2.3.3 SDS-PAGE分析 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-32页 |
| 2.4.1 加热预处理时间对蛋白水解的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2 底物浓度对蛋白水解的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.3 酶浓度对蛋白水解的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.4 酶解时间对蛋白水解的影响 | 第30页 |
| 2.4.5 酶解条件的优化 | 第30-32页 |
| 2.4.6 大豆蛋白的纯化及分子量分析 | 第32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-34页 |
| 第三章 大豆蛋白纳米粒子的制备及理化性质检测 | 第34-47页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验试剂和仪器 | 第34-36页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第35-36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.3.1 叶酸修饰大豆蛋白 | 第36-37页 |
| 3.3.1.1 叶酸修饰大豆蛋白的制备 | 第36页 |
| 3.3.1.2 叶酸修饰大豆蛋白结构表征 | 第36-37页 |
| 3.3.2 纳米粒子的制备 | 第37页 |
| 3.3.3 纳米粒子稳定性与电位检测 | 第37页 |
| 3.3.4 纳米粒子形貌观察 | 第37-38页 |
| 3.3.5 纳米粒子元素分析 | 第38页 |
| 3.3.6 纳米粒子载药及体外释放 | 第38-39页 |
| 3.3.6.1 盐酸阿霉素标准曲线测定 | 第38页 |
| 3.3.6.2 纳米粒子载药 | 第38-39页 |
| 3.3.6.3 体外药物释放 | 第39页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第39-46页 |
| 3.4.1 叶酸修饰大豆蛋白 | 第39-40页 |
| 3.4.2 纳米粒子的合成 | 第40-43页 |
| 3.4.3 稳定性与电荷分析 | 第43-44页 |
| 3.4.4 载药及体外释放 | 第44-46页 |
| 3.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 生物学效应评估 | 第47-65页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验试剂和仪器 | 第47-49页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第47-48页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第48-49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-54页 |
| 4.3.0 试剂的配制 | 第49-50页 |
| 4.3.1 平面细胞毒性实验 | 第50-51页 |
| 4.3.2 细胞摄取纳米粒子的定性与定量分析 | 第51-52页 |
| 4.3.2.1 FITC标记纳米粒子 | 第51页 |
| 4.3.2.2 细胞摄取纳米粒子定性分析 | 第51页 |
| 4.3.2.3 细胞摄取纳米粒子定量分析 | 第51-52页 |
| 4.3.3 多细胞球体的渗透和抑制 | 第52-53页 |
| 4.3.3.1 多细胞球体的构建 | 第52页 |
| 4.3.3.2 多细胞球体的渗透 | 第52页 |
| 4.3.3.3 多细胞球体的抑制 | 第52-53页 |
| 4.3.4 体内生物学效应评估 | 第53-54页 |
| 4.3.4.1 小鼠肝癌模型的构建 | 第53页 |
| 4.3.4.2 体内药物分布 | 第53页 |
| 4.3.4.3 体内抗肿瘤 | 第53-54页 |
| 4.3.4.4 组织学分析 | 第54页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第54-63页 |
| 4.4.1 平面细胞毒性实验 | 第54-55页 |
| 4.4.2 平面细胞摄取定性分析 | 第55-56页 |
| 4.4.3 平面细胞摄取定量分析 | 第56-57页 |
| 4.4.4 多细胞球体渗透 | 第57-58页 |
| 4.4.5 多细胞球体的生长抑制 | 第58-60页 |
| 4.4.6 体内药物分布 | 第60-61页 |
| 4.4.7 体内抗肿瘤 | 第61-62页 |
| 4.4.8 组织学分析 | 第62-63页 |
| 4.5 本章小结 | 第63-65页 |
| 结论与展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第78页 |
