D-对羟基苯甘氨酸生物合成酶的优化及固定化研究
摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
引言 | 第11-13页 |
第1章 实验研究 | 第13-44页 |
1.1 材料与方法 | 第13-27页 |
1.1.1 材料 | 第13-18页 |
1.1.2 方法 | 第18-27页 |
1.2 结果 | 第27-38页 |
1.2.1 菌种的分离、纯化和鉴定 | 第27-28页 |
1.2.2 海因酶工程菌构建 | 第28-29页 |
1.2.3 海因酶的表达与动力学参数测定 | 第29-30页 |
1.2.4 基于 16S rRNA的同源分析 | 第30页 |
1.2.5 海因酶催化通道的分子模拟分析 | 第30-31页 |
1.2.6 海因酶突变库的构建及筛选 | 第31-32页 |
1.2.7 突变酶活力的测定 | 第32页 |
1.2.8 海因酶的酶学性质测定 | 第32-34页 |
1.2.9 固定化全细胞的各项参数优化 | 第34-38页 |
1.2.10 固定化全细胞小球批次实验测定 | 第38页 |
1.3 讨论 | 第38-40页 |
1.4 结论 | 第40页 |
参考文献 | 第40-44页 |
第2章 综述 | 第44-59页 |
2.1 海因酶产生菌的筛选方法 | 第45-47页 |
2.1.1 唯一氮源法 | 第45页 |
2.1.2 双层琼脂法 | 第45-46页 |
2.1.3 微孔快速筛选法 | 第46页 |
2.1.4 分子生物学筛选法 | 第46-47页 |
2.2 海因酶的定向进化 | 第47-50页 |
2.2.1 易错PCR | 第47-48页 |
2.2.2 DNA shuffling | 第48-49页 |
2.2.3 随机引物体外重组法 | 第49-50页 |
2.3 酶的固定化研究 | 第50-52页 |
2.3.1 酶的固定化技术 | 第50-51页 |
2.3.2 细胞的固定化技术 | 第51-52页 |
2.4 结论和展望 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-59页 |
结论 | 第59-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
导师简介 | 第61-63页 |
作者简介 | 第63-66页 |
学位论文数据集 | 第66页 |