| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 第1章 绪论 | 第17-33页 |
| 1.1 引言 | 第17-18页 |
| 1.2 干细胞的分类 | 第18-22页 |
| 1.2.1 胚胎干细胞(ESC) | 第18-19页 |
| 1.2.2 神经干细胞（NSCs） | 第19页 |
| 1.2.3 诱导多能干细胞（iPSCs） | 第19-20页 |
| 1.2.4 间充质干细胞(MSCs) | 第20-22页 |
| 1.3 MSCS移植的途径 | 第22-23页 |
| 1.4 MSCS移植的时间和剂量 | 第23-24页 |
| 1.5 MSCS治疗脑梗死的作用机制 | 第24-33页 |
| 1.5.1 细胞替代学说 | 第24-25页 |
| 1.5.2 MSCs的神经保护和神经营养机制 | 第25-26页 |
| 1.5.3 MSCs促进脑梗死后的血管再生 | 第26-27页 |
| 1.5.4 MSCs在脑梗死中的炎症与免疫调节作用 | 第27-33页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第33-59页 |
| 2.1 实验材料 | 第33-38页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第33-34页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第34-37页 |
| 2.1.4 其他主要试剂的配制方法 | 第37-38页 |
| 2.2 实验方法 | 第38-59页 |
| 2.2.1 ADMSCs分离与培养 | 第38-39页 |
| 2.2.2 ASMSCs表面标志物的检测 | 第39页 |
| 2.2.3 诱导ADMSCs的成脂细胞分化 | 第39-40页 |
| 2.2.4 ADMSCs的成骨诱导 | 第40-41页 |
| 2.2.5 大鼠大脑中动脉闭塞（MCAO）模型的制备和分组 | 第41页 |
| 2.2.6 行为功能检查 | 第41-43页 |
| 2.2.7 TTC染色测定梗死体积 | 第43-44页 |
| 2.2.8 血脑屏障(Blood-brian barrier，BBB）的检测 | 第44页 |
| 2.2.9 TUNEL染色检测凋亡 | 第44-46页 |
| 2.2.10 免疫荧光染色 | 第46-48页 |
| 2.2.11 RT-PCR检查 | 第48-50页 |
| 2.2.12 免疫蛋白电泳（westernblot） | 第50-57页 |
| 2.2.13 统计分析 | 第57-59页 |
| 第3章 实验结果 | 第59-73页 |
| 3.1 ADMSCS的表面标志物的检测 | 第59-60页 |
| 3.2 ADMSCS向成脂细胞和成骨细胞的定向分化能力 | 第60-61页 |
| 3.3 ADMSCS治疗能显著减少大鼠的梗死体积，并改善MCAO大鼠的神经功能缺损症状 | 第61-63页 |
| 3.4 ADMSCS治疗组能减轻BBB的透通性 | 第63-67页 |
| 3.5 自体ADMSCS移植能减轻MCAO大鼠的凋亡和炎症反应 | 第67-70页 |
| 3.6 ADMSCs 移植对 UPR 的影响 | 第70-73页 |
| 第4章 讨论 | 第73-82页 |
| 第5章 结论 | 第82-83页 |
| 第6章 创新点 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-107页 |
| 作者简介及在学习期间所取得的科研成果 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
