| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第11-17页 |
| 1.1 研究目的与意义 | 第11页 |
| 1.2 植物HD-Zip转录因子的研究进展 | 第11-15页 |
| 1.2.1HD-Zip转录因子的结构特征及分类 | 第12-13页 |
| 1.2.2HD-Zip转录因子的生物学功能 | 第13-15页 |
| 1.3 生物信息学及其应用 | 第15页 |
| 1.4 基因沉默VIGS技术及其应用 | 第15-16页 |
| 1.5 技术路线 | 第16-17页 |
| 2 材料和方法 | 第17-28页 |
| 2.1 番茄HD-Zip基因家族的生物信息学分析 | 第17-18页 |
| 2.1.1 实验方法 | 第17-18页 |
| 2.2 番茄HD-Zip Ⅰ 基因组织特异性及非生物胁迫表达模式分析 | 第18-21页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.3 番茄Sl HZ11和Sl HZ15基因沉默载体的构建 | 第21-25页 |
| 2.3.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.3.2 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.4 番茄植株侵染 | 第25-26页 |
| 2.4.1 植物材料准备 | 第25页 |
| 2.4.2 侵染过程 | 第25-26页 |
| 2.5 基因沉默植株沉默效果检测 | 第26页 |
| 2.5.1 沉默植株表型观察 | 第26页 |
| 2.5.2 基因表达量分析 | 第26页 |
| 2.6 基因沉默植株逆境胁迫处理及样品采集 | 第26页 |
| 2.7 相关生理指标测定 | 第26-28页 |
| 2.7.1 丙二醛 | 第26页 |
| 2.7.2 脯氨酸 | 第26-27页 |
| 2.7.3 过氧化物酶 | 第27-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-53页 |
| 3.1 番茄HD-Zip基因家族的生物信息学分析 | 第28-37页 |
| 3.1.1 番茄HD-Zip基因家族的挖掘及鉴定 | 第28-30页 |
| 3.1.2 番茄HD-Zip基因家族的进化分析 | 第30-31页 |
| 3.1.3 番茄HD-Zip基因家族保守结构域分析 | 第31-33页 |
| 3.1.4 番茄HD-Zip基因家族内含子、外显子及基因保守序列分析 | 第33页 |
| 3.1.5 番茄HD-Zip基因家族染色体定位分析 | 第33-35页 |
| 3.1.6 番茄HD-Zip基因家族二级结构和三级结构预测分析 | 第35-37页 |
| 3.2 番茄HD-Zip Ⅰ 基因组织特异性及非生物胁迫表达模式分析 | 第37-44页 |
| 3.2.1 番茄HD-Zip Ⅰ 基因家族启动子分析 | 第37-38页 |
| 3.2.2 RNA的提取 | 第38-39页 |
| 3.2.3 番茄HD-Zip I组织特异性分析 | 第39-40页 |
| 3.2.4 番茄HD-Zip Ⅰ 基因非生物胁迫表达模式分析 | 第40-44页 |
| 3.3 番茄SlHZ11和SlHZ15基因沉默载体的构建 | 第44-47页 |
| 3.3.1 SlHZ11和SlHZ15基因的扩增 | 第44页 |
| 3.3.2 pTRV2载体的制备 | 第44-45页 |
| 3.3.3 重组质粒的制备及筛选 | 第45页 |
| 3.3.4 重组质粒的测序及比对 | 第45-47页 |
| 3.4 农杆菌侵染 | 第47-53页 |
| 3.4.1 番茄幼苗沉默效果 | 第47-48页 |
| 3.4.2 不同组织沉默效果 | 第48-49页 |
| 3.4.3 不同逆境处理条件下Sl HZ11和Sl HZ15沉默植株生理指标的分析 | 第49-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 4.1 番茄HD-Zip基因家族的生物信息学分析 | 第53页 |
| 4.2 番茄组织特异性及非生物胁迫表达模式分析 | 第53-54页 |
| 4.2.1 番茄组织特异性分析 | 第53-54页 |
| 4.2.2 番茄HD-Zip Ⅰ 非生物胁迫表达模式分析 | 第54页 |
| 4.3 SlHZ11和Sl HZ15基因的功能分析 | 第54-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第63页 |
