| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 发酵原料中有机磷农药的危害及检测现状 | 第10-12页 |
| 1.2 功能性核酸及其在有机磷农药检测上的应用 | 第12-16页 |
| 1.2.1 功能性核酸的种类及发展现状 | 第12-13页 |
| 1.2.2 功能性核酸在有机磷农药检测上的应用 | 第13-16页 |
| 1.3 本论文主要研究内容 | 第16-19页 |
| 第二章 基于功能性核酸可控聚集Hemin的水胺硫磷检测研究 | 第19-31页 |
| 2.1 前言 | 第19-20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第20页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.3.1 反应条件的优化 | 第20-21页 |
| 2.3.2 本传感体系对水胺硫磷的检测性能 | 第21页 |
| 2.3.3 实际样品分析 | 第21-22页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第22-30页 |
| 2.4.1 本传感体系的检测原理 | 第22-24页 |
| 2.4.2 反应条件的优化结果 | 第24-26页 |
| 2.4.2.1 溶剂对Hemin检测水胺硫磷的影响 | 第24页 |
| 2.4.2.2 Hemin浓度对水胺硫磷检测的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.2.3 ssDNA对水胺硫磷检测的影响 | 第25-26页 |
| 2.4.3 水胺硫磷的检测灵敏度 | 第26-28页 |
| 2.4.4 水胺硫磷的检测特异性 | 第28-29页 |
| 2.4.5 实际样品检测结果 | 第29-30页 |
| 2.5 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 功能性核酸增强Hemin催化活性的水胺硫磷比色检测研究 | 第31-51页 |
| 3.1 水胺硫磷增强Hemin催化活性的比色检测研究 | 第31-41页 |
| 3.1.1 前言 | 第31页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.2.1 主要试剂 | 第31-32页 |
| 3.1.2.2 主要仪器 | 第32页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.1.3.1 酶促反应动力学测定 | 第32页 |
| 3.1.3.2 反应条件的优化 | 第32页 |
| 3.1.3.3 本传感体系对水胺硫磷的检测性能 | 第32-33页 |
| 3.1.3.4 实际样品分析 | 第33页 |
| 3.1.4 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 3.1.4.1 本传感体系的检测原理 | 第33-34页 |
| 3.1.4.2 反应条件的优化结果 | 第34-35页 |
| 3.1.4.3 酶促反应动力学 | 第35-37页 |
| 3.1.4.4 水胺硫磷的检测灵敏度 | 第37-38页 |
| 3.1.4.5 水胺硫磷的检测特异性 | 第38-39页 |
| 3.1.4.6 实际样品检测结果 | 第39页 |
| 3.1.5 本章小结 | 第39-41页 |
| 3.2 功能性核酸和水胺硫磷增强Hemin催化活性的比色检测研究 | 第41-51页 |
| 3.2.1 前言 | 第41页 |
| 3.2.2 实验材料 | 第41-42页 |
| 3.2.2.1 主要试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2.2 主要仪器 | 第42页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第42-43页 |
| 3.2.3.1 酶促反应动力学测定 | 第42页 |
| 3.2.3.2 反应条件的优化 | 第42页 |
| 3.2.3.3 本传感体系对水胺硫磷的检测性能 | 第42-43页 |
| 3.2.3.4 实际样品分析 | 第43页 |
| 3.2.4 结果与讨论 | 第43-49页 |
| 3.2.4.1 本传感体系的检测原理 | 第43-44页 |
| 3.2.4.2 反应条件的优化结果 | 第44-45页 |
| 3.2.4.3 酶促反应动力学 | 第45-47页 |
| 3.2.4.4 水胺硫磷的检测灵敏度 | 第47-48页 |
| 3.2.4.5 水胺硫磷的检测特异性 | 第48-49页 |
| 3.2.4.6 实际样品检测结果 | 第49页 |
| 3.2.5 本章小结 | 第49-51页 |
| 第四章 基于功能性核酸调控AuNPs催化活性的乐果比色检测研究 | 第51-64页 |
| 4.1 前言 | 第51-52页 |
| 4.2 实验材料 | 第52页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第52页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-54页 |
| 4.3.1 AuNPs的制备 | 第52页 |
| 4.3.2 反应条件的优化 | 第52-53页 |
| 4.3.3 本传感体系对乐果的检测性能 | 第53页 |
| 4.3.4 实际样品分析 | 第53-54页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第54-62页 |
| 4.4.1 本传感体系的检测原理 | 第54-55页 |
| 4.4.2 反应条件的优化结果 | 第55-60页 |
| 4.4.2.1 缓冲液的pH对乐果检测的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.2.2 ssDNA浓度对乐果检测的影响 | 第56-57页 |
| 4.4.2.3 AuNPs用量对乐果检测的影响 | 第57-58页 |
| 4.4.2.4 H2O2浓度对乐果检测的影响 | 第58-59页 |
| 4.4.2.5 OPD浓度对乐果检测的影响 | 第59-60页 |
| 4.4.3 乐果的检测灵敏度 | 第60-61页 |
| 4.4.4 乐果的检测特异性 | 第61-62页 |
| 4.4.5 实际样品检测结果 | 第62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-64页 |
| 第五章 结论与展望 | 第64-67页 |
| 5.1 研究结论 | 第64-65页 |
| 5.2 主要创新点 | 第65-66页 |
| 5.3 研究展望 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第75-77页 |
