| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第11-14页 |
| 第二章 大鼠骨髓间质干细胞（Ficoll密度梯度离心法）、传代培养及细胞表面标志物的联合鉴定 | 第14-24页 |
| 1.前言 | 第14-15页 |
| 2.实验目的 | 第15页 |
| 3.实验材料 | 第15-17页 |
| 3.1. 实验动物 | 第15页 |
| 3.2. 实验试剂和仪器 | 第15-16页 |
| 3.3. 实验试剂的配置 | 第16-17页 |
| 4. 实验方法 | 第17-19页 |
| 4.1. 大鼠BMSCs的分离及原代培养 | 第17-19页 |
| 4.2. 细胞流式技术检测BMSCs特异性表面标志物 | 第19页 |
| 5. 实验结果 | 第19-21页 |
| 5.1. 大鼠BMSCs的形态及分布 | 第19-20页 |
| 5.2 细胞流式技术检测 BMSCs 特异性表面标志物 | 第20-21页 |
| 6. 结果讨论 | 第21-24页 |
| 第三章 Toll样受体-3 和-4 对干细胞成软骨分化的影响和机制 | 第24-44页 |
| 1. 前言 | 第24页 |
| 2.实验目的 | 第24-25页 |
| 3.实验材料 | 第25-30页 |
| 3.1. 细胞系 | 第25页 |
| 3.2. 实验试剂/试剂盒 | 第25页 |
| 3.3. 实验仪器及器材 | 第25-26页 |
| 3.4.实验试剂的配置 | 第26-30页 |
| 4.实验方法 | 第30-35页 |
| 4.1. 大鼠BMSCs细胞系的获取 | 第30-31页 |
| 4.2.成软骨诱导前蛋白多糖和II型胶原的检测 | 第31-32页 |
| 4.3. 试验分组处理及成软骨诱导 | 第32-33页 |
| 4.4. 成软骨诱导后蛋白多糖和II型胶原的检测 | 第33页 |
| 4.5. 实时荧光定量PCR检测Sox-9 基因 | 第33-35页 |
| 5. 实验结果 | 第35-39页 |
| 5.1. 成软骨诱导前蛋白多糖及II型胶原的表达 | 第35-36页 |
| 5.2. 成软骨诱导后蛋白多糖及II型胶原的变化 | 第36-38页 |
| 5.3. TLRs对Sox-9 基因表达的影响 | 第38-39页 |
| 6. 讨论 | 第39-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 致谢 | 第51-53页 |
| 在学期间发表的学术论文及其它学术成果 | 第53-55页 |
| 综述：TLR在微生物识别到自噬中的重要作用 | 第55-73页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 附录：主要略缩词一览表 | 第73-74页 |
